体外条件下不同乳酸菌对旅行者腹泻的干预机制

李思童,贾晓蒙,路江浩,郭红敏,刘明月,孙 策,任 磊,杨 玲*

(河北一然生物科技股份有限公司 研发中心,河北 石家庄 050000)

摘 要:为探究乳酸菌对旅行者腹泻(TD)的干预机制,该研究采用HT-29细胞及肠道菌群批量发酵模拟系统考察乳酸菌拮抗产肠毒素大肠杆菌(ETEC)损伤肠道屏障效果。结果表明,植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)LP45、嗜酸乳杆菌(Lactobacillus acidophilus)La28、鼠李糖乳杆菌(Lactobacillus rhamnosus)LR519、乳双歧杆菌(Bifidobacterium lactis)BAL531及嗜热链球菌(Streptococcus thermophilus)S131、S709能够抑制ETEC生长并特异性缓解其造成水通道蛋白(AQP-3)、紧密连接蛋白、黏蛋白(MUC2、MUC5AC)表达下调,同时对白细胞介素-8(IL-8)分泌上调和肠上皮细胞凋亡有一定缓解作用。菌株S131抑制ETEC生长和促进HT-29细胞增殖的效果最好,菌株LP45使AQP-3信使核糖核酸(mRNA)相对表达显著提升(2.77±0.60)倍(P<0.05),菌株S869使IL-8分泌显著下降(35.07±3.19)%(P<0.05),菌株LP45和S709使MUC2、MUC5AC(mRNA)相对表达分别显著提升(2.39±0.15)、(1.89±0.21)倍(P<0.05);菌株S869分别使ZO-1、occludin mRNA相对表达显著上调(15.24±0.93)倍、(9.06±0.09)倍(P<0.05),菌株LR519和BAL531分别使ZO-2 mRNA相对表达显著上调(14.83±1.60)、(13.27±1.01)倍(P<0.05)。综上,乳酸菌可缓解ETEC造成的肠道屏障损伤。

关键词:乳杆菌;产肠毒素大肠杆菌;旅行者腹泻;干预机制

旅行者腹泻(traveler's diarrhea,TD)指在旅行期间或旅行后,每天有3次及以上未成形便,同时伴随腹痛、恶心、呕吐、发热或血便、粘液便的急性肠道传染病,全球TD发病率为30%~50%。调查发现,80%~90%的TD由细菌感染,其中40%~70%病原菌为产肠毒素大肠杆菌(enterotoxigenic Escherichia coli,ETEC)[1-2]。青壮年由于接触范围广为旅行者腹泻易感人群,另外老人、小孩、孕妇等免疫力低下者感染后症状较严重,可能引起心血管疾病、低血糖或脱水等症状[3]。ETEC感染后在黏附素作用下黏附、定殖于肠道上皮细胞,通过释放肠毒素引起细胞过度凋亡,破坏上皮细胞正常生理功能,导致肠道通透性和渗透性增加,造成肠道屏障受损,从而引起炎症和腹泻。同时,肠道屏障的损伤更有利于ETEC的定殖和肠毒素分泌入胞内,使其致病性增强,加剧肠道炎症与腹泻症状[4-5]

益生菌是指足量摄入时能够对宿主产生健康益处的活性微生物,能够定植于肠道发挥多种益生功能[6-7]。其中,乳酸菌的特定菌株可以通过调节肠道微生态平衡、增强肠道屏障、改善机体免疫功能等多种机制改善肠道健康,是公认的有益菌[8-9]。大量研究表明,乳酸菌对腹泻具有缓解作用。臧凯丽等[10]研究发现,植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)和嗜酸乳杆菌(Lactobacillus acidophilus)能够改善便秘和腹泻人群的肠道菌群结构及相关症状。ŁUKASIK J等[11-12]研究发现,植物乳杆菌(Lactiplantibacillus plantarum)、副干酪乳杆菌(Lacticaseibacillus paracasei)、乳双歧杆菌(Bifidobacterium lactis)、鼠李糖乳杆菌(Lactobacillus rhamnosus)等乳酸菌能够降低儿童抗生素腹泻发病风险,并恢复营养不良婴儿的肠道菌群结构减少腹泻的发生。另外,OKSANEN P等[13-14]研究发现,服用乳酸杆菌和鼠李糖乳杆菌GG(Lactobacillus rhamnosus GG,LGG)能够显著降低TD发病率。但不同种属乳酸菌对旅行者腹泻的缓解效果具有差异性,其具体调控机制尚不明确。

因此,本研究采用肠道体外发酵模拟系统,通过考察不同种属乳酸菌对ETEC抑制效果,调节水通道蛋白-3(aquaporin-3,AQP-3)表达和免疫因子分泌能力,以及拮抗ETEC造成的肠道屏障损伤方面的作用效果,进一步探明不同种属乳酸菌对TD的干预机制及效果差异。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

1.1.1 菌株与细胞

植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)LP45、嗜酸乳杆菌(Lactobacillus acidophilus)La28、鼠李糖乳杆菌(Lactobacillus rhamnosus)LR519、乳双歧杆菌(Bifidobacterium lactis)BAL531、嗜热链球菌(Streptococcus thermophilus)S131、S709、S869、产肠毒素大肠杆菌(ETEC)、人体结肠癌细胞系HT-29细胞株:河北一然生物科技股份有限公司。

1.1.2 化学试剂

胎牛血清、胰蛋白酶细胞消化液(0.25%,含乙二胺四乙酸(ethylenediamine tetraacetic acid,EDTA),不含酚红)、磷酸盐缓冲液(phosphate buffer solution,PBS):武汉普诺赛生命科技有限公司;细胞/细菌总核糖核酸(ribonucleic acid,RNA)提取试剂盒、FastKing互补脱氧核糖核酸(complementary deoxyribonucleic acid,cDNA)第一链合成试剂盒、SuperReal 荧光定量预混试剂增强版(SYBR Green)试剂盒:天根生化科技有限公司;IL-8酶联免疫吸附测定(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)试剂盒:北京四正柏生物科技有限公司;0.25%胰蛋白酶溶液(含乙二胺四乙酸(EDTA),溶于磷酸盐缓冲液PBS):武汉普诺赛生命科技有限公司;细胞计数试剂盒-8(cell counting kit-8,CCK-8):生工生物工程(上海)股份有限公司。

1.1.3 培养基

HT-29细胞完全培养基、McCoy's 5A培养基:武汉普诺赛生命科技有限公司;MRS肉汤培养基、LB培养基、哥伦比亚血平板:北京陆桥技术股份有限公司。

基础发酵培养基:参考文献[15]配制,调节pH至6.5,然后厌氧条件下在10 mL的西林瓶中分装5 mL培养基,密封后于115 ℃高压灭菌25 min。

1.2 仪器与设备

Mini细胞计数仪:美国Nexcelom公司;Multiskan Sky酶标仪、Fresco21型高速离心机:赛默飞世尔科技公司;CKX41倒置显微镜:日本奥林巴斯公司;DH-160HI二氧化碳培养箱、LRH-250F生化培养箱:昆山一恒仪器有限公司;9700型聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)扩增仪:杭州博日科技有限公司;LM2 012实时荧光定量PCR(realtime fluorescent quantitative PCR,RT-fqPCR)分析仪:上海复星医学检测设备有限公司。

1.3 实验方法

1.3.1 乳酸菌、ETEC及HT-29细胞的培养

菌株活化:植物乳杆菌LP45、嗜酸乳杆菌La28、鼠李糖乳杆菌LR519、乳双歧杆菌BAL531、嗜热链球菌S131、S709、S869以3%(V/V)的接种量接种于MRS肉汤培养基,于37 ℃恒温培养箱中培养18 h,连续传代3次;ETEC以3%(V/V)的接种量接种于LB培养基中,37 ℃恒温培养箱中培养18 h,连续传代3次。

菌悬液浓度调整:取第3代培养18 h以恢复菌种活力后的各菌株调整菌液浓度。3代菌种4 ℃、5 000 r/min离心5 min,收集菌体用PBS洗涤2次4 ℃、5 000 r/min离心5 min后,去除上清,用MyCoy's 5A培养基重悬,利用细胞计数仪调整菌株LP45、La28、LR519、BAL531、S131、S709、S869 及ETEC菌体浓度均为108 CFU/mL,备用。

细胞培养:将在-80 ℃超低温冰箱中保存的细胞HT-29取出,37 ℃恒温水浴迅速解冻复苏,培养瓶中加入一定量的HT-29细胞完全培养基,5%CO2培养箱中37 ℃培养24 h至细胞长满培养瓶底面积80%后,加入1 mL胰蛋白酶细胞消化液消化处理1 min至细胞悬浮后加入2mL HT-29细胞完全培养基终止消化,细胞悬液于12 000 r/min离心2 min后收集细胞并转移至75 mL中号培养瓶中补充HT-29细胞完全培养基至15 mL,重复上述操作传代3次进行后续实验。

1.3.2 体外发酵实验分组及发酵液的制备

取正常人新鲜粪便用生理盐水按照1∶10(g∶mL)比例稀释过滤得到粪便接种液,取500 μL粪便接种液接种到基础发酵培养基中,按照表1分组及接种ETEC与各乳酸菌菌悬液,于37 ℃培养24 h后得到发酵液,将发酵液于9 000 r/min离心3 min,上清液经0.22 μm膜过滤后备用。

表1 体外发酵实验分组及接种
Table 1 Grouping and inoculation of fermentation experiments in vitro

分组 接种方法对照组(Control) 仅接种粪便接种液培养24 h ETEC组(ETEC)治疗组(ETEC+菌株)接种粪便接种液后接种等量的ETEC菌悬液培养24 h接种粪便接种液后接种等量的ETEC菌悬液培养12 h后分别接种等量的各乳酸菌菌悬液培养12 h

1.3.3 发酵液与HT-29细胞共培养

将1.3.1节中活化HT-29细胞浓度调整为2×105个/mL,每孔2 mL细胞液接于24孔板中,培养16~20 h细胞贴壁后,更换2 mL新鲜培养液。对照组、ETEC组及治疗组分别每孔接种1.3.2节中各分组发酵上清液200 μL于24孔板,接种200 μL HT-29细胞培养液为空白组,置于5%CO2培养箱中37 ℃培养12 h后每孔加入100 μL胰蛋白酶消化处理1 min至细胞悬浮,加入200 μL HT-29细胞完全培养基终止消化,收集细胞悬液于12 000 r/min离心2 min后分别收集细胞及上清液,-80 ℃贮藏待用。

1.3.4 不同种属乳酸菌抑制ETEC能力测定

采用牛津杯双层平板法,按照1.3.1将调整浓度后的ETEC涂布到哥伦比亚血平板上,立即放入牛津杯,加入菌体浓度均为108 CFU/mL的各乳酸菌菌悬液100 μL,以生理盐水为对照,37 ℃培养18 h,采用游标卡尺测量抑菌圈直径,当抑菌圈直径>8 mm表示有抑菌作用[16]

1.3.5 HT-29细胞免疫因子质量浓度的测定

使用1.3.3节中所收集的细胞上清液再次于12 000 r/min离心2 min,取上清分装至无酶PE管中,按照ELISA试剂盒说明书测定各样品细胞因子质量浓度,细胞培养基作为空白孔。

1.3.6 实时荧光定量PCR分析

按照RNA Easy Fast动物组织/细胞RNA提取试剂盒操作说明提取1.3.3节中共培养后HT-29细胞RNA,并通过Fast King cDNA第一链合成试剂盒操作说明反转录为cDNA,并在-80 ℃保存。使用Super Real 荧光定量预混试剂增强版(SYBR Green)试剂盒进行RT-fqPCR,分析黏蛋白(mucin,MUC)(MUC2、MUC5AC)、水通道蛋白-3(aquaporin-3,AQP-3)基因与紧密连接蛋白基因,包括闭合小环蛋白-1/2(zonula occluden-1/2,ZO-1/2)及咬合蛋白(occludin)相对表达水平,RT-fqPCR引物序列见表2。

表2 RT-fqPCR引物序列
Table 2 Primer sequences of RT-fqPCR

引物 引物序列(5'-3')β-actin MUC2 MUC5AC AQP-3 ZO-1 ZO-2 occludin F:5'-TTTTAGGATGGCAAGGGACTT-3'R:5'-GATGAGTTGGCATGGCTTTA-3'F:5'-GACCCGCACTATGTCACCTT-3'R:5'-GGACAGGACACCTTGTCGTT-3'F:5'-CCAGCTCTGTGGCTTACTCC-3'R:5'-TCGGAGGTGGATATTGAAGG-3'F:5'-AGACAGCCCCTTCAGGATTT-3'R:5'-TCCCTTGCCCTGAATATCTG-3'F:5'-ATCCCTCAAGGAGCCATTC-3'R:5'-CACTTGTTTTGCCAGGTTTTA-3'F:5'-AAAGCAGAGCGAACGAAGAG-3'R:5'-TTTAGTTGCCAGACCCGTTC-3'F:5'-CCAATGTCGAGGAGTGGG-3'R:5'-CGCTGCTGTAACGAGGCT-3'

参照SYBR Green试剂盒说明书要求进行加样。加样后进行RT-fqPCR扩增,扩增体系、扩增参数参考张秋月等[17]的研究并加以修改:95 ℃、15 s,60 ℃、30 s,72 ℃、30 s,循环45次。溶解曲线分析步骤为65~95 ℃,每步升0.5 ℃,保持5 s。以β-actin基因为内参基因,采用2-ΔΔCt法计算各实验组相对于对照组各基因的相对表达倍数。

1.3.7 细胞增殖能力测定

将活化HT-29细胞浓度调整为2×105个/mL,每孔100 μL细胞液接于96孔板中,于5%CO2培养箱中37 ℃培养16~20 h细胞贴壁后,更换新鲜培养液,每孔接种分组发酵上清液10 μL于96孔板,接种10 μL细胞培养液为空白组,置于5%CO2培养箱中37 ℃培养12 h后参考CCK-8试剂盒说明书检测细胞增殖情况:每孔内加入10 μL的CCK-8溶液,细胞培养箱内孵育1 h,在波长450 nm处测定吸光度值(OD450 nm值。细胞相对增殖率计算公式如下:

式中:As表示实验组OD450nm值,Ac表示空白对照组OD450nm值。

1.3.8 数据统计分析

所有实验均设置3组平行,数据以“平均值±标准差”表示。采用Origin 9.5软件绘图,采用Excel 2016、SPSS 23.0软件对数据进行分析处理。

2 结果与分析

2.1 不同种属乳酸菌对ETEC的抑制能力

由图1可知,菌株LP45、La28、LR519、BAL531、S131、S709及S869抑菌圈直径均>8 mm,表现出明显的抑制ETEC的作用,其中嗜热链球菌S131抑菌圈直径达到(18.00±0.59)mm,抑菌作用最显著(P<0.05)。表明不同种属乳酸菌均具有良好的抑制致病菌、缓解TD的能力。相关研究表明[18-19],乳酸菌通过分泌抑菌物质,如短链脂肪酸,降低环境pH从而抵抗致病菌,或与致病菌竞争营养物质及黏附位点等方式阻断致病菌黏附与增殖。不同菌株生长过程中合成短链脂肪酸能力与黏附能力不尽相同,这可能是不同乳酸菌抑制致病菌能力存在差异的原因。

图1 不同种属乳酸菌对产肠毒素大肠杆菌的抑制能力
Fig.1 Inhibition ability of different species of lactic acid bacteria on enterotoxigenic Escherichia coli

不同字母表示各菌株抑菌作用差异显著(P<0.05)。下同。

2.2 不同种属乳酸菌拮抗ETEC引起的HT-29细胞炎症因子表达

细菌感染性腹泻中,致病菌ETEC影响了肠道屏障,侵入肠壁固有层,破坏免疫稳态,引发炎性病变,导致脓血渗出性腹泻,损害肠道健康[20-21]。由图2可知,ETEC组促炎因子白细胞介素-8(interleukin,IL-8)浓度相较于Control组显著增加了(20.82±5.70)%(P<0.05),表现出较高的促炎作用,可能引起炎症病变。菌株LP45、La28、BAL531、S131、S709、S869的干预使得IL-8浓度相较于ETEC组分别下降了(24.46±2.51)%、(30.45±4.05)%、(6.13±1.56)%、(30.16±4.34)%、(12.99±2.75)%和(35.07±3.19)%,其中菌株S869抑制作用显著(P<0.05)。与该结果相似,YANG J等[22-23]研究发现,乳杆菌属能够有效抑制ETEC刺激HT-29细胞产生炎症因子。大量动物实验也表明,乳酸菌能够降低仔猪或小鼠体内炎症因子水平,从而降低炎症反应[24-25]。结果表明,上述菌株能够抑制ETEC刺激HT-29细胞产生的促炎因子IL-8,从而抑制炎症发生、提高肠道免疫力,有效缓解ETEC感染造成的肠道炎症及渗出性腹泻。

图2 不同种属乳酸菌拮抗产肠毒素大肠杆菌引起的HT-29细胞炎症因子表达
Fig.2 Different species of lactic acid bacteria antagonized the expression of inflammatory factors in HT-29 cells induced by enterotoxigenic Escherichia coli

2.3 不同种属乳酸菌对HT-29细胞AQP-3表达的影响

致病菌能够直接侵入肠道上皮细胞,引起细胞功能障碍,同时破坏肠道微绒毛减少肠道吸收面积,造成吸收障碍,从而引起吸收障碍性或渗出性腹泻[26-27]。水通道蛋白(aquaporins,AQPs)是位于细胞膜上的蛋白质,能够调节水在细胞中的转运,调节AQP-3表达能够有效改善便秘或腹泻症状[28-29]。由图3可知,与Control相比,ETEC使HT-29细胞AQP-3 mRNA相对表达下调至(34±7)%。与ETEC相比,除菌株S869外,其余各乳酸菌的干预均可改善ETEC造成的AQP-3表达下调,其中菌株LP45及S709提升作用显著,分别使AQP-3 mRNA相对表达显著提升(2.77±0.60)倍、(2.39±0.14)倍(P<0.05)。虽然ETEC引起腹泻的水外流机制尚未明确,但其可能与AQP-3表达下调有关,各乳酸菌通过恢复AQP-3的表达、提高肠道吸水能力,降低粪便含水量,从而改善ETEC造成的腹泻。该结果与IKARASHI N等[30-31]鼠李糖乳杆菌LB1改善ETEC引起仔猪腹泻的机制相似。

图3 不同种属乳酸菌对HT-29细胞AQP-3表达的影响
Fig.3 Effect of different species of lactic acid bacteria on AQP-3 expression in HT-29 cells

2.4 不同种属乳酸菌对HT-29细胞黏蛋白表达的影响

肠道中的杯状细胞能够分泌黏蛋白形成一层黏液屏障,黏液屏障作为肠道机械屏障的重要组成之一,能够保护肠道上皮细胞免受病原菌和有害物质的侵袭、一定程度上能够阻止致病菌的黏附,同时对肠上皮细胞保护及肠道转运过程至关重要[32-33]。由图4可知,与Control相比,ETEC分别使HT-29细胞MUC2、MUC5AC mRNA相对表达水平下调至(75±5)%(P>0.05)和(52±1)%(P<0.05),而各乳酸菌的干预能够改善ETEC对黏蛋白基因的抑制。其中,植物乳杆菌LP45能够显著提升MUC2信使核糖核酸(messenger ribonucleic acid,mRNA)相对表达至(2.39±0.15)倍(P<0.05),嗜热链球菌S709显著提升MUC5AC mRNA相对表达至(1.89±0.21)倍(P<0.05),从而增加肠道的黏液分泌,改善ETEC感染造成的黏液屏障损伤,增强肠道屏障、恢复黏膜屏障功能。

图4 不同种属乳酸菌对HT-29细胞黏蛋白表达的影响
Fig.4 Effect of different species of lactic acid bacteria on mucin expression in HT-29 cells

不同字母表示同一指标不同菌株差异显著(P<0.05)。

2.5 不同种属乳酸菌对HT-29细胞紧密连接蛋白表达的影响

紧密连接的肠道上皮细胞是肠道机械屏障的基础,能够有效避免致病菌或大分子物质透过细胞间隙,而致病菌可通过改变紧密连接蛋白结构与功能等方式破坏肠道屏障[33-34]。由图5可知,与Control相比,ETEC对紧密连接蛋白表达的抑制效果并不明显,仅使HT-29细胞ZO-2 mRNA相对表达下调至(63±4)%。另外,各乳酸菌的干预能够在ETEC存在的情况下上调各紧密连接蛋白的相对表达,其中嗜热链球菌S869分别使ZO-1、occludin mRNA相对表达显著上调(15.24±0.93)倍、(9.06±0.09)倍(P<0.05),鼠李糖乳杆菌LR519和乳双歧杆菌BAL531分别使ZO-2 mRNA相对表达显著上调(14.83±1.60)倍、(13.27±1.01)倍(P<0.05),表示各乳酸菌均可上调细胞紧密连接蛋白表达,增强肠上皮细胞的紧密连接,恢复肠道屏障功能,但其作用效果存在一定的菌株差异。这与朱翠等[35-36]研究发现,乳酸菌能够调节肠上皮细胞紧密连接蛋白表达及其在胞内的分布,肠道内双歧杆菌、乳杆菌分泌的短链脂肪酸能够维持肠黏膜上皮细胞紧密连接、保护肠道机械屏障的结果相似。

图5 不同种属乳酸菌对HT-29细胞紧密连接蛋白表达的影响
Fig.5 Effect of different species of lactic acid bacteria on tight junction protein expression in HT-29 cells

2.6 不同种属乳酸菌拮抗ETEC造成的HT-29细胞损伤

肠上皮细胞是肠道机械屏障的另一组成部分,其完整性对肠道吸收营养物质、阻挡致病菌和内毒素的入侵至关重要[37]。由图6可知,ETEC组HT-29细胞增殖率降低(2.06±0.08)%(P<0.05)。除菌株S869外,各乳酸菌的干预可改善ETEC造成的肠上皮细胞损伤,其中嗜热链球菌S131能够使HT-29细胞的相对增殖率显著提高至(21.07±1.21)%(P<0.05),结果表明,上述乳酸菌能够清除ETEC产生的毒素类物质,产生有益于肠上皮细胞生长的物质,从而拮抗ETEC对肠上皮细胞的损伤。该结果与VON MENTAER A等[38-39]研究发现,ETEC通过破坏细胞骨架、引起炎症反应等机制对宿主肠道上皮细胞造成损伤结论一致。

图6 不同种属乳酸菌拮抗产肠毒素大肠杆菌造成的HT-29细胞损伤
Fig.6 Different species of lactic acid bacteria antagonized the damage of HT-29 cells caused by enterotoxigenic Escherichia coli

3 结论

植物乳杆菌LP45、嗜酸乳杆菌La28、鼠李糖乳杆菌LR519、乳双歧杆菌BAL531、嗜热链球菌S131、S709可以通过抑制致泻性大肠杆菌ETEC,拮抗ETEC感染造成的AQP-3表达下调、炎症因子分泌增加及上皮细胞凋亡,提高肠道吸水能力、增强肠道免疫,从而改善腹泻症状,缓解水样便或脓血便。此外,上述乳酸菌均在不同程度上缓解ETEC感染造成的肠道黏膜屏障与紧密连接损伤,增强肠道机械屏障,从而维持基本肠道健康。综合来说,菌株LP45、La28、LR519、BAL531、S131、S709及S869能够通过抑制肠道致病菌,恢复肠道通透性及正常肠道屏障生理功能,降低肠道炎症等机制缓解TD腹泻症状,但不同乳酸菌在各机制下的作用效果存在一定差异。

参考文献:

[1]LEVI M E,FNP,WHNP,et al.Identification and management of Traveler's Diarrhea[J].J Midwifery Wom Heal,2021,66(3):380-384.

[2]WANG L P,ZHOU S X,WANG X,et al.Etiological,epidemiological,and clinical features of acute diarrhea in China[J].Nat Commun,2021,12:2464.

[3]ADLER A V,CICCOTTI H R,TRIVITT S J H,et al.What's new in travellers' diarrhoea: updates on epidemiology, diagnostics, treatment and long-term consequences[J].J Travel Med,2022,29(1):taab099.

[4]赵玥明,侯艳梅,赵怡晴.鼠李糖乳杆菌MP108缓解细菌性腹泻的作用研究[J].食品工业科技,2022,43(21):20-27.

[5]李保良,庞胜美,吕林芬,等.产肠毒素大肠杆菌诱导肠上皮细胞凋亡的研究进展[J].微生物学报,2023,63(6):2340-2349.

[6]张彦位,路江浩,鄢梦洁,等.益生菌对微生态系统的改善作用及其应用研究进展[J].食品工业科技,2021,42(4):369-379.

[7]VAN DER HEE B,WELLS J M.Microbial regulation of host physiology by short-chain fatty acids[J].Trend Microbiol,2021,29(8):700-712.

[8]胡明珍.副干酪乳杆菌NXU--19004发酵枸杞汁的条件优化及其对小鼠便秘的改善作用研究[D].银川:宁夏大学,2021.

[9] LEW L C, LIONG M T.Bioactives from probiotics for dermal health:functions and benefits[J].J Appl Microbiol,2013,114(5):1241-1253.

[10]臧凯丽,江岩,孙勇,等.益生菌剂调整肠道疾病人群菌群结构丰度水平的研究[J].食品科学,2018,39(13):133-143.

[11]ŁUKASIK J,DIERIKX T,BESSELING-VAN VAN DER VAART I,et al.Multispecies probiotic for the prevention of antibiotic-associated diarrhea in children:a randomized clinical trial[J].JAMA Pediatr,2022,176(9):860-866.

[12]CASTRO-MEJIA J L,O'FERRALL S,KRYCH L,et al.Restitution of gut microbiota in Ugandan children administered with probiotics (Lactobacillus rhamnosus GG and Bifidobacterium animalis subsp.lactis BB-12)during treatment for severe acute malnutrition[J].Gut microbes,2020,11(4):855-867.

[13] OKSANEN P, SALMINEN S, SAXELIN M.Prevention of traveller's diarrhoea by Lactobacillus GG[J].Annals of Medicine, 1990, 22(1):53-66.

[14]SALMINEN S,DEIGHTON M.Lactic acid bacteria in the gut in normal and disorders states[J].Digest Dis Sci,1992,10(4):227-238.

[15]陈军奎,刘伟,王欣,等.成年人不同阶段肠道菌群及其代谢差异的研究[J].胃肠病学和肝病学杂志,2019,28(3):276-281.

[16]张秀红,刘婷婷.具广谱抑菌活性乳酸菌的筛选[J].乳业科学与技术,2010,33(2):56-59.

[17]张秋月,王刚,陈坤朋,等.嗜酸乳杆菌在初始弱酸碱条件下对HT-29细胞免疫因子的调节作用[J].食品科学,2020,41(19):197-197.

[18]李海新,寇秀颖,谢新强,等.高抗菌活性乳酸菌拮抗食源性致病菌的研究进展[J].微生物学报,2022,62(10):3732-3740.

[19]康慎敏,武瑞赟,穆文强,等.乳酸菌拮抗食源性致病菌的研究及应用进展[J].食品科学,2022,43(1):250-259.

[20]XU C L,YAN S Q,GUO Y,et al.Lactobacillus casei ATCC 393 alleviates enterotoxigenic Escherichia coli K88-induced intestinal barrier dysfunction via TLRs/mast cells pathway[J].Life Sci,2020,244:117281.

[21]DE LA FUENTE-NUNEZ C,MENEGUETTI B T,FRANCO O L,et al.Neuromicrobiology: How microbes influence the brain[J].ACS Chem Neurosci,2018,9(2):141-150.

[22]YANG J,QIU Y,HU S,et al.Lactobacillus plantarum inhibited the inflammatory response induced by enterotoxigenic Escherichia coli K88 via modulating MAPK and NF-κB signalling in intestinal porcine epithelial cells[J].J Appl Microbiol,2021,130(5):1684-1694.

[23]GAO J C,CAO S T,XIAO H,et al.Lactobacillus reuteri 1 enhances intestinal epithelial barrier function and alleviates the inflammatory response induced by enterotoxigenic Escherichia coli K88 via suppressing the MLCK signaling pathway in IPEC-J2 cells[J].Front Immunol,2022,13:897395.

[24] LEE J S, AWJI E G, LEE S J, et al.Effect of Lactobacillus plantarum CJLP243 on the growth performance and cytokine response of weaning pigs challenged with enterotoxigenic Escherichia coli[J].J Animal Sci,2012,90(11):3709-3717.

[25]YUE Y,HE Z J,ZHOU Y H,et al.Lactobacillus plantarum relieves diarrhea caused by enterotoxin-producing Escherichia coli through inflammation modulation and gut microbiota regulation[J].Food Funct,2020,11:10362-10374.

[26]STEPHEN J.Pathogenesis of infectious diarrhea[J].Can J Gastroenterol,2001,15(10):669-683.

[27]吴狄.厦大新生旅行者腹泻流行病学及三仁汤干预机理研究[D].厦门:厦门大学,2018.

[28] ZHOU Z Y, ZHAN J S, CAI Q Y, et al.The water transport system in astrocytes-aquaporins[J].Cells,2022,11(16):2564.

[29]YE Y W,RAN J H,YANG B X,et al.Aquaporins in digestive system[J].Adv Exp Medi Biol,2023,1398:145-154.

[30]IKARASHI N,KON R,IIZASA T,et al.Inhibition of aquaporin-3 water channel in the colon induces diarrhea[J].Biol Pharm Bull,2012,35(6):957-962.

[31]WU T,SHI Y T,ZHANG Y Y,et al.Beneficial effects of Lactobacillus zeae on the gut health of piglets challenged with Enterotoxigenic Escherichia coli[J].Res Square,2020:1-12.

[32]GUSTAFSSON J K,JOHANSSON M E V.The role of goblet cells and mucus in intestinal homeostasis[J].Nat Rev Gastroenterol Hepatol,2022,19:785-803.

[33]吴姚平.肠道微生物对肠道屏障影响的初步探究[D].南昌:南昌大学,2017.

[34]DÍAZ-CORÁNGUEZ M,LIU X,ANTONETTI D A.Tight junctions in cell proliferation[J].Int J Mol Sci,2019,20(23):5972.

[35]朱翠,师子彪,蒋宗勇,等.乳酸杆菌在调节肠道屏障功能中的作用[J].中国畜牧兽医,2012,39(9):118-122.

[36]PENG L Y,LI Z R,GREEN R S,et al.Butyrate enhances the intestinal barrier by facilitating tight junction assembly via activation of AMP-activated protein kinase in Caco-2 cell monolayers[J].J Nutr,2009,139(9):1619-1625.

[37]ANGULO-URARTE A,VAN D W T,HUVENEERS S.Cell-cell junctions as sensors and transducers of mechanical forces[J].Biochim Biophys Acta Biomembr,2020,1862(9):183316.

[38]VON MENTAER A,CONNOR T R,WIELER L H,et al.Identification of enterotoxigenic Escherichia coli(ETEC)clades with long-term global distribution[J].Nat Genet,2014,46(12):1321-1326.

[39]ISIDEAN S D,RIDDLE M S,SAVARINO S J,et al.A systematic review of ETEC epidemiology focusing on colonization factor and toxin expression[J].Vaccine,2011,29(37):6167-6178.

Intervention mechanism of different lactic acid bacteria on traveler's diarrhea in vitro

LI Sitong,JIA Xiaomeng,LU Jianghao,GUO Hongmin,LIU Mingyue,SUN Ce,REN Lei,YANG Ling*
(Research&Development Center,Hebei Inatural Biotech Co.,Ltd.,Shijiazhuang 050000,China)

Abstract:In order to explore the intervention mechanism of lactic acid bacteria on traveler's diarrhea(TD),the antagonistic effect of lactic acid bacteria on intestinal barrier damage caused by enterotoxigenic Escherichia coli(ETEC)was investigated by simulation system of batch fermentation with HT-29 cells and intestinal flora.The results showed that Lactobacillus plantarum LP45, Lactobacillus acidophilus La28, Lactobacillus rhamnosus LR519,Bifidobacterium lactis BAL531,and Streptococcus thermophilus S131 and S709 could inhibit the growth of ETEC,and specifically alleviate the expression down-regulation of aquaporin-3(AQP-3),tight-junction protein and mucin(MUC2 and MUC5AC).At the same time,it could alleviate the secretion up-regulation of interleukin-8 (IL-8) and intestinal epithelial cell apoptosis.Strain S131 had the optimal effect on inhibiting ETEC growth and promoting HT-29 cells proliferation.Strain LP45 significantly increased the relative expression of AQP-3 messenger ribonucleic acid(mRNA)by(2.77±0.60)times(P<0.05).Strain S869 significantly decreased IL-8 secretion by(35.07±3.19)%(P<0.05),and strain LP45 and S709 significantly increased the relative expression of MUC2 and MUC5AC(mRNA)by(2.39±0.15)and(1.89±0.21)times(P<0.05),respectively.Strain S869 significantly up-regulated the relative mRNA expression of ZO-1 and occludin by(15.24±0.93)and(9.06±0.09)times(P<0.05),respectively.Strains LR519 and BAL531 significantly up-regulated the relative expression of ZO-2 mRNA by(14.83±1.60)and(13.27±1.01)times(P<0.05),respectively.In conclusion,lactic acid bacteria could alleviate the intestinal barrier damage caused by ETEC.

Key words:lactic acid bacteria;enterotoxigenic Escherichia coli;traveler's diarrhea;intervention mechanism

中图分类号:R975.3;R574.5

文章编号:0254-5071(2023)09-0085-06

doi:10.11882/j.issn.0254-5071.2023.09.015

引文格式:李思童,贾晓蒙,路江浩,等.体外条件下不同乳酸菌对旅行者腹泻的干预机制[J].中国酿造,2023,42(9):85-90.

收稿日期:2022-12-22 修回日期:2023-03-16

基金项目:石家庄市高层次科技创新创业人才(06202103);河北省农业高质量发展关键共性技术攻关专项项目(21322804D)

作者简介:李思童(1997-),女,硕士,研究方向为益生菌与人体健康。

*通讯作者:杨 玲(1984-),女,高级工程师,本科,研究方向为食品质量与安全。