丁酸梭菌扩大培养干燥工艺及菌粉贮存稳定性研究

亓秀晔1,张志焱1,谢全喜1,刘乃芝1,郭杨丽1,孟凡进2

(1.山东宝来利来生物工程股份有限公司 山东省动物微生态制剂重点实验室,山东 泰安 271000;2.山东省寿光市文家街道畜牧兽医工作站,山东 潍坊 262700)

摘 要:该研究以丁酸梭菌(Clostridium butyricum)BLCC1-0022为研究对象,采用生物发酵罐扩大培养,利用真空冷冻干燥法和喷雾干燥法制备菌粉,并以菌株存活率为评价指标,对其温度耐受性及贮存稳定性进行研究。结果表明,该菌株种子液传代次数在3次以内,扩大培养至18 h时制备的冻干菌粉活菌数(4.1×1010 CFU/g)高于喷干菌粉(3.7×109 CFU/g);喷干菌粉和冻干菌粉耐受高温条件(100 ℃、10 min),活菌数分别为3.96×109 CFU/g、3.10×1010 CFU/g,存活率分别为96.34%和73.81%;耐受模拟储运条件(45 ℃、8 h),活菌数分别为2.80×109 CFU/g、1.93×1010 CFU/g,存活率分别为68.29%、45.09%;4 ℃、-20 ℃和室温条件下贮存180 d,活菌数分别在1010 CFU/g和109 CFU/g水平,存活率均>73.08%,在37 ℃下贮存不宜超过60 d。因此,冻干菌粉活菌数更高,而喷干菌粉的温度耐受性和存贮稳定性更高。

关键词:丁酸梭菌;扩大培养;冷冻干燥;喷雾干燥;贮存稳定性

丁酸梭菌(Clostridium butyricum)又名酪酸菌,隶属于厚壁菌门(Firmicutes)芽孢杆菌科(Bacillaceae)梭菌属(Clostridium),是一种严格厌氧、可产生孢子的革兰氏阳性菌,其代谢产物丁酸、乙酸、丙酸以及各种消化酶等可修复损伤的肠道黏膜及调节肠道微生态环境,有益于动物健康及生长发育[1-4],是理想的饲料用抗生素替代品。目前,对于丁酸梭菌的研究多集中于菌株筛选及生物学功能分析[5-8],小规模发酵提高菌体量和产孢率[9-11]等方面。然而,为获得较大生物产量菌制剂,需要采用生物发酵罐进行扩大培养,尽管采用大型发酵罐发酵的过程中可以较好地控制小规模培养发酵过程中不可控因素[12],但是扩大培养后菌株的存在形式影响贮存期。国内外最常见的是液体和半固体的保藏方式,但这两种方式不仅容易造成过多的菌体失活,而且对保藏温度具有较高要求,通常要在4~10 ℃低温保藏,既增加了成本又限制了其产品流通[13]。鉴于此,研究丁酸梭菌扩大培养后的干燥方式具有重要意义。

真空冷冻干燥法[20-21]和喷雾干燥法[21-22]均是将益生菌发酵液制成活菌制剂/粉剂,是较为理想的保藏方法。真空冷冻干燥技术是利用原料中水分升华原理,将含水物料冻结到共晶点温度以下,并在真空条件下升温,以达到水分直接升华形成蒸汽并从物料中排出的效果[23]。喷雾干燥技术是指菌体浓缩液经喷雾干燥分散于热空气中,料液水分快速蒸发形成固体粉末的过程,此法用时较短、制粉迅速、可使料液由液态经雾化和干燥直接变成为固体粉末。两种干燥方式均可最大程度的保留物料的营养价值,使产品实现常温下的长期保存与便捷运输[24]。目前,已有采用喷雾干燥技术制备乳杆菌和双歧杆菌菌粉的相关研究,但未见采用该技术制备丁酸梭菌菌粉的研究报道。

综上所述,为解决丁酸梭菌产量低、保持菌体的稳定性和延长保质期等问题,本研究以丁酸梭菌(Clostridium butyricum)BLCC1-0022为研究对象,利用前期实验室优化的发酵条件[10],进一步利用生物发酵罐扩大培养并利用真空冷冻干燥法和喷雾干燥法制备菌粉,并以菌株存活率为评价指标,对其温度耐受性及贮存稳定性进行研究,以期获得最佳贮存效果,为丁酸梭菌的大规模生产及应用提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

1.1.1 菌株与培养基

丁酸梭菌(Clostridium butyricum)BLCC1-0022:由山东宝来利来生物工程股份有限公司研究院提供。

1.1.2 化学试剂

葡萄糖(分析纯)、可溶性淀粉(生化试剂)、CaCO3(分析纯):山东祥瑞药业有限公司;蛋白胨(生化试剂):北京奥博星生物技术有限责任公司;牛肉浸膏(生化试剂):天津市英博生化试剂有限公司;氯化钠、MgSO4·7H2O、MnSO4·H2O(均为分析纯):天津博迪化工股份有限公司;D-环丝氨酸:青岛海博生物技术有限公司。

1.1.3 培养基

胰胨-亚硫酸盐-环丝氨酸琼脂基础培养基:青岛海博生物技术有限公司。

梭菌增殖培养基[25]:葡萄糖30 g/L,蛋白胨20 g/L,牛肉浸膏15 g/L,CaCO3 20 g/L,pH 7.0±0.2,固体培养基中添加琼脂15 g/L。118 ℃高压灭菌30 min。

梭菌计数培养基[25]:取47 g胰胨-亚硫酸盐-环丝氨酸琼脂基础培养基加热溶解于1 000 mL蒸馏水中,分装于500 mL三角瓶中,每瓶250 mL,121 ℃灭菌15 min。冷却至(50±1)℃时,每250 mL培养基中加入过滤除菌的0.5%的D-环丝氨酸溶液20 mL,混匀。

丁酸梭菌发酵培养基[18]:可溶性淀粉24.2 g/L、蛋白胨32.7 g/L、牛肉浸膏33.1 g/L、CaCO3 24.7 g/L、MgSO4·7H2O 0.25 g/L、MnSO4·H2O 0.25 g/L,pH 7.0±0.2,121 ℃灭菌20min。为防止产气过多造成污染,发酵培养基需加入1.0g/L泡敌。

1.2 仪器与设备

DHP-9082电热恒温培养箱:上海一恒科技有限公司;THZ-C恒温振荡器:扬州培英实验仪器有限公司;HH-4数显恒温水浴锅:国华电器有限公司;LABS厌氧培养箱:美国PLAS-LABS;T6新世纪紫外可见分光光度计:上海普元仪器有限公司。

1.3 试验方法

1.3.1 丁酸梭菌原代种子液的制备

用接种铲取丁酸梭菌沙土管1/4铲于装有100 mL丁酸梭菌增殖培养基的丝口瓶中,拧紧瓶盖,于37 ℃静置培养12 h,4 ℃保存,作为原代种子液(N0)。

1.3.2 丁酸梭菌种子液传代次数对其液体发酵的影响

用原代种子液接种于装有100 mL丁酸梭菌发酵培养基的丝口瓶中,拧紧瓶盖,37 ℃静置培养12 h时,镜检观察菌体形态,取3 mL培养液作为下一批发酵的种子液,作为第一代传代种子液(N1),培养至N4,直至镜检观察出现异性菌体(不是典型的梭状),且不再形成芽孢为止。每个代数3个平行。

1.3.3 丁酸梭菌生长曲线的绘制

将20 L发酵罐空消(121 ℃、30 min)后,装入丁酸梭菌发酵培养基16 L进行实消(121 ℃、30 min),待培养基温度降至40 ℃以下时,按照3%(V/V)的接种量接入原代种子液,罐压0.02 MPa,搅拌混匀(记为0 h)。37 ℃静置、厌氧培养至22 h,每隔2 h取样,检测发酵液pH值、活菌数和芽孢形成率。每个处理3个平行。

1.3.4 丁酸梭菌菌粉的制备

种子液制备:用接种铲取丁酸梭菌沙土管1铲于装有3 L丁酸梭菌增殖培养基的三角瓶中,共接种12 L,均密封,于37 ℃静置培养12 h,得到12 L种子液。

发酵罐培养:500 L发酵罐121 ℃空消30 min;接入丁酸梭菌发酵培养基400 L,121 ℃实消30 min,待培养基温度降至40 ℃以下时,将上述培养好的12 L种子液全部接入,搅拌混匀,37 ℃静置、厌氧培养,罐压0.02 MPa,根据产气升压情况,6 h开始每隔2 h取样镜检,测定发酵液pH值。当镜检菌体芽孢增多,肉眼可见芽孢率达到90%以上,pH降至5.20或者pH在2 h内不再下降时,停止发酵。每个发酵试验重复3次以上。

干燥工艺:发酵结束后将发酵液搅拌混匀,取10 L发酵液,5 000 r/min于4 ℃离心10 min,取菌泥加1%无菌水搅拌均匀,-80 ℃预冻1 h,然后利用真空冷冻干燥机冷冻干燥(-80 ℃、真空度25 Pa)48 h,得到冻干菌粉;其余发酵液喷雾冷冻干燥(进口温度120 ℃,流速为130 mL/h,转速为50 r/min,压力为1.0×104Pa,出口温度100 ℃),制成喷干菌粉。

1.3.5 丁酸梭菌菌粉温度耐受性试验

(1)高温耐受试验

将丁酸梭菌冻干菌粉和喷干菌粉分别置于电热恒温培养箱中,设置温度为60 ℃、70 ℃、80 ℃、90 ℃、100 ℃、110 ℃、120 ℃,处理10 min。自然冷却至室温,各取1.00 g菌粉于100 mL带有玻璃珠的0.9%灭菌生理盐水瓶中,振荡混匀,检测活菌数,并计算存活率。

(2)模拟储运温度耐受试验

分别取丁酸梭菌冻干菌粉和喷干菌粉1.00 g于100 mL带玻璃珠的0.9%灭菌生理盐水瓶中,于35 ℃和45 ℃各处理8 h,期间不间断摇匀,自然冷却至室温,振荡混匀,检测活菌数,并计算存活率。

1.3.6 丁酸梭菌存贮稳定性试验

将丁酸梭菌冻干菌粉和喷干菌粉分别在-20 ℃、4 ℃、37 ℃和室温条件下(18~25 ℃)贮存180 d,各取1.00 g菌粉于100 mL带有玻璃珠的0.9%灭菌生理盐水瓶中,振荡混匀,分别在贮存0、7 d、14 d、60 d、90 d、150 d、180 d时检测活菌数。

1.3.7 测定方法

活菌数的测定:准确吸取发酵液1 mL(菌粉1.00 g),用稀释平板计数法[26],取适当稀释度的样品至丁酸梭菌计数培养基,待培养基完全凝固后,装入2.5 L厌氧培养袋中,每个袋中放置不多于10个平板,加入厌氧产气包,封口,培养箱37℃培养24h左右,结果用CFU/mL发酵液(CFU/g菌粉)表示。

芽孢率:先将发酵液/菌粉按照上述方法进行活菌计数,另取适当梯度的稀释液于80 ℃水浴处理10 min后再用稀释平板计数法测定芽孢数[27],重复3次,计算芽孢率,其计算公式如下:

2 结果与分析

2.1 丁酸梭菌BLCC1-0022种子液传代次数对其液体发酵的影响

丁酸梭菌BLCC1-0022种子液传代次数对其液体发酵的影响见表1。

表1 丁酸梭菌BLCC1-0022种子液传代次数对其液体发酵的影响
Table 1 Effect of passage times of Clostridium butyricum BLCC1-0022 seed liquid on its liquid fermentation

注:同行肩标不同小写字母表示差异显著(P<0.05)。下同。

由表1可知,传代次数为N1、N2时,菌体开始产气较快,随着时间延长,产气增多,说明菌体活化速率快,生长旺盛;当传代次数为N3时,产气缓慢,活化时间长,菌体生长缓慢。因此,需要保证种子液生长至对数生长期,此时,接入发酵罐中菌株产气旺盛,生长速率最快[28];丁酸梭菌可产生内生芽孢,生长后期还会形成脱落芽孢,这也是一种休眠后再繁殖的表现,因此芽孢形成时间长短与菌体生长周期的成正比[29]。N1和N2代种子液产生芽孢时间短(12 h),芽孢率均在90%以上,而N3代芽孢形成力弱。此外,丁酸梭菌在发酵过程中会产生大量氢气,同时代谢产生大量的醋酸、丁酸和乙酸,能大幅度的降低发酵液的酸碱度,而较低的pH影响菌体生长。丁酸梭菌BLCC1-0022传代次数为N1、N2、N3时,发酵液pH值分别为5.15、5.31、5.78,活菌数分别为1.97×108 CFU/mL、1.89×108 CFU/mL、0.42×108 CFU/mL。说明丁酸梭菌BLCC1-0022种子液传代次数在3次以内,可保证转接后菌体快速生长,N1和N2代的生长性能优于N3。

2.2 丁酸梭菌BLCC1-0022生长曲线的研究

丁酸梭菌BLCC1-0022生长过程中的活菌数与pH值的变化见图1,菌体生长情况见图2。

由图1可知,0~4 h为生长迟缓期,活菌数开始增加,pH较发酵初期降低了1.72;6~16 h为对数生长期,活菌数持续升高至1.06×108 CFU/mL,pH持续下降至5.19;16~20 h为稳定期,pH值降低不明显,pH值约5.15,活菌数稳定在3×108 CFU/mL;20~22 h后进入衰亡期,活菌数降低,pH值有所升高,pH值升高至5.30。因此,6~16 h为对数生长期,此时转接可保证菌体旺盛,快速提高生物产量。

图1 丁酸梭菌BLCC1-0022发酵过程中活菌数及pH值的变化
Fig.1 Changes of viable bacteria count and pH value of Clostridium butyricum BLCC1-0022

由图2可知,丁酸梭菌BLCC1-0022菌体形态变化与生长曲线基本一致。0~4 h菌体形态多为直杆状或多杆状;6~16 h菌体形态由直杆形态中间分裂,变成两两短杆相连的菌形态,然后分开变为两个短杆状形态,逐渐膨大呈梭形;16~20 h菌体形态多为典型的中间膨胀形成梭状形态,或是梭形菌形态从菌体中间形成芽孢,最后芽孢脱落,变为空心型的脱落芽孢;22 h后可出现异性菌体,逐渐衰亡。

图2 丁酸梭菌BLCC1-0022菌体形态在6 h(A)、10 h(B)、14 h(C)及20 h(D)的变化
Fig.2 Changes of Clostridium butyricum BLCC1-0022 mycelial morphology at 6 h (A),10 h (B),14 h (C) and 20 h (D)

2.3 丁酸梭菌BLCC1-0022的扩大培养

丁酸梭菌BLCC1-0022 500 L发酵罐生长情况见表2。

由表2可知,丁酸梭菌BLCC1-0022在500 L发酵罐扩大培养时,随着发酵时间的延长,pH值逐渐降低;发酵时间为16 h时,pH值降至5.17;此后,pH值降低幅度很小。因此,18 h时停止发酵。此时,酸梭菌BLCC1-0022发酵液的pH值为5.15;当发酵时间为0~18 h时,活菌数整体呈逐渐增加的趋势,发酵时间为18 h时,活菌数最高,为2.89×108 CFU/mL;发酵时间为6 h时,开始出现芽孢,芽孢率为10%,当发酵时间为6~18 h时,芽孢率逐渐升高,发酵时间为18 h时,芽孢率最高,为96%。这均与生长曲线基本一致。以发酵18 h的菌液经过干燥处理制成菌粉,得到的喷干菌粉活菌数为3.7×109 CFU/g,冻干粉活菌数4.1×1010 CFU/g,均于-20 ℃保存。因此,丁酸梭菌BLCC1-0022在500 L发酵罐扩大培养时间为18 h,冻干菌粉活菌数高于喷干菌粉。

表2 丁酸梭菌BLCC1-0022在500 L发酵罐中的生长情况
Table 2 Growth of Clostridium butyricum BLCC1-0022 in 500 L fermenter

2.4 丁酸梭菌BLCC1-0022菌粉温度耐受性

丁酸梭菌BLCC1-0022菌粉温度耐受试验结果见表3。

表3 丁酸梭菌BLCC1-0022菌粉温度耐受试验结果
Table 3 Results of temperature tolerance test of Clostridium butyricum BLCC1-0022 powder

由表3可知,冻干菌粉在60~100 ℃条件下处理10 min,活菌数保持在1010CFU/g,与对照组在一个数量级,存活率>70%;110~120 ℃条件下处理10 min,活菌数下降1个数量级,存活率>10%,表明冻干菌粉在10 min的处理条件下的耐受温度为100 ℃。喷干菌粉在60~100 ℃条件下处理10 min,活菌数保持在109 CFU/g,与对照组相比,几乎无损失;当温度为110 ℃时,活菌数下降一个数量级,存活率为20.24%;当温度为120 ℃时,活菌数下降2个数量级,存活率只有1.48%。若以<50%的存活率为标准,丁酸梭菌BLCC1-0022喷干菌粉和冻干菌粉置于100 ℃条件下处理10 min的存活率分别为96.34%和73.81%,耐受性能好。因此,丁酸梭菌BLCC1-0022菌粉可耐受高温条件(100 ℃、10 min),且喷干菌粉温度耐受性优于冻干菌粉。

2.5 丁酸梭菌BLCC1-0022菌粉模拟储运温度耐受性

丁酸梭菌BLCC1-0022菌粉模拟储运温度耐受试验结果见表4。

表4 丁酸梭菌BLCC1-0022模拟储运温度耐受试验结果
Table 4 Results of simulated storage and transportation temperature tolerance test of Clostridium butyricum BLCC1-0022

丁酸梭菌作为一种益生菌,其运输过程多采用冷链物流,但是不可避免的是冷藏物质的保质期和高品质可能在运输过程中由于冷链中断而丧失。如在贮藏、运输和销售过程中,为了节省能源间歇性关闭制冷,以及货物的装卸等都会带来强烈的温度波动,导致连续的低温体系得不到保障,尤其是夏季高温期,容易引起运输物质的持续升温,造成活性物质损失[30]。由表4可知,冻干菌粉于35 ℃和45 ℃处理8 h时,活菌数均在1010 CFU/g水平,与对照样品处于同一数量级,35 ℃条件下的存活率高于45 ℃。喷干菌粉在35 ℃和45 ℃处理8 h时,活菌数均在109 CFU/g水平,与对照样品同一个数量级,35 ℃存活率高于45 ℃。说明冻干菌粉和喷干菌粉在储运过程中会受温度的影响,温度越高活菌损失较大,但当温度为45 ℃时,活菌数均与对照样品在一个数量级水平,说明菌粉模拟储运性能均较好。因此,丁酸梭菌BLCC1-0022菌粉可耐受模拟储运条件(45 ℃、8 h),且冻干菌粉优于喷干菌粉。

2.6 丁酸梭菌BLCC1-0022存贮稳定性

丁酸梭菌BLCC1-0022存贮稳定性试验结果见表5。

表5 丁酸梭菌BLCC1-0022存贮稳定性试验结果
Table 5 Results of storage stability test of Clostridium butyricum BLCC1-0022

菌粉贮藏也受多种因素的影响,如存贮空间、储存环境、产品自身特性等[31-32]。由表5可知,冻干菌粉和喷干菌粉在-20 ℃、4 ℃和室温条件下存放180 d,活菌数分别在1010 CFU/g和109 CFU/g水平,均与0 d时的原样品的活菌数处于一个数量级水平,存活率均>73.08%,说明在此条件下冻干菌粉和喷干菌粉的存贮性能均较好;而在37 ℃条件下,随着存贮时间延长,活菌数降低,损失率升高,至60 d时,冻干菌粉和喷干菌粉的活菌数分别与0 d时的原样品的活菌数处于一个数量级水平,存活率分别为33.99%和100%;存贮时间至90 d时,冻干菌粉和喷干菌粉的活菌数分别在109 CFU/g和108 CFU/g水平,均与0 d时的原样品降低1个数量级,存活率分别为12.06%和19.23%。说明冻干菌粉和喷干菌粉在-20 ℃、4 ℃和室温条件下可贮存180 d(存活率均>73.08%),在37 ℃贮存不宜超过60 d。表明冻干菌粉的活菌数更高,而喷干菌粉的存贮稳定性更高。

3 结论

该研究以丁酸梭菌(Clostridium butyricum)BLCC1-0022为研究对象,对其利用生物发酵罐扩大培养,利用真空冷冻干燥法和喷雾干燥法制备菌粉,对其温度耐受性及贮存稳定性进行研究。结果表明,该菌株种子液传代次数在3次以内,扩大培养至18 h时制备的冻干菌粉活菌数高于喷干菌粉;喷干菌粉和冻干菌粉耐受高温条件(100 ℃、10 min),活菌数分别为3.96×109 CFU/g、3.10×1010 CFU/g,存活率分别为96.34%和73.81%;耐受模拟储运条件(45 ℃、8 h),活菌数分别为2.80×109 CFU/g、1.93×1010 CFU/g,存活率分别为68.29%、45.09%;4 ℃、-20 ℃和室温条件下贮存180 d,活菌数分别在1010 CFU/g和109 CFU/g水平,存活率均>73.08%,在37 ℃贮存不宜超过60 d。表明冻干菌粉活菌数更高,而喷干菌粉的温度耐受性和存贮稳定性更高。

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Drying technology of Clostridium butyricum for expanding culture and storage stability of bacterial powder

QI Xiuye1,ZHANG Zhiyan1,XIE Quanxi1,LIU Naizhi1,GUO Yangli1,MENG Fanjin2
(1.Shandong Key Laboratory of Animal Microecological Preparations,Shandong BaoLai-LeeLai Bioengineering Co.,Ltd.,Tai'an 271000,China;2.Animal Husbandry and Veterinary Workstation of Shandong Province Shouguang Wenjia Subdistrict,Weifang 262700,China)

Abstract:Using Clostridium butyricum BLCC1-0022 as research object,it was expanded for culture in biological fermenter,and the bacterial powder was prepared by vacuum freeze drying and spray drying.Using the survival rate of the strain as evaluation index,the temperature tolerance and storage stability of bacterial powder were studied.The results showed that when the strain seed liquid batches within three times,the number of viable bacteria(4.1×1010 CFU/g) of freeze-dried bacterial powder prepared by expanding the culture to 18 h was higher than that of spray dried bacterial powder(3.7×109 CFU/g).The spray dried bacterial powder and freeze-dried bacterial powder could tolerate high temperature conditions(100 ℃,10 min),the number of viable bacteria was 3.96×109 CFU/g and 3.10×1010 CFU/g,and the survival rate was 96.34% and 73.81%,respectively.The spray dried bacterial powder and freeze-dried bacterial powder could tolerate simulated storage and transportation conditions (45 ℃,8 h),the number of viable bacteria was 2.80×109 CFU/g and 1.93×1010 CFU/g,and the survival rate was 68.29%and 45.09%,respectively.When stored at 4 ℃,-20 ℃and room temperature for 180 d,the number of viable bacteria was 1010 CFU/g and 109 CFU/g,respectively,and the survival rate was more than 73.08%,and it should not be stored at 37 ℃for more than 60 d.Therefore,the number of viable bacteria of freeze-dried bacterial powder was higher,while the temperature tolerance and storage stability of spray dried bacterial powder were higher.

Key words:Clostridium butyricum;expanding culture;freeze drying;spray drying;storage stability

中图分类号:TS252

文章编号:0254-5071(2023)04-0151-06

doi:10.11882/j.issn.0254-5071.2023.04.023

引文格式:亓秀晔,张志焱,谢全喜,等.丁酸梭菌扩大培养干燥工艺及菌粉贮存稳定性研究[J].中国酿造,2023,42(4):151-156.

收稿日期:2022-09-27

修回日期:2022-11-24

基金项目:国家重点研发计划项目(2017YFD0501000)

作者简介:亓秀晔(1987-),女,助理研究员,硕士,主要从事动物微生态制剂研发工作。