大鲵肝肽酒制备及其对小鼠酒后肝脏保护作用研究

曾允灏1,苏 文1,2,郑小莉1,王景华3,陈德经1,2*

(1.陕西理工大学 生物科学与工程学院,陕西 汉中 723001;2.陕西理工大学 陕西省资源生物重点实验室,陕西 汉中 723001;3.汉中市科技资源统筹中心,陕西 汉中 723001)

摘 要:以大鲵肝脏和白酒为原料制备大鲵肝肽酒,通过酶解法制备不同分子质量肝肽,对其体外乙醇脱氢酶(ADH)激活活性、体外抗氧化活性和溶解度进行测定,并采用生理盐水、白酒、大鲵肝肽酒分别灌胃小鼠,对小鼠肝脏及血清中相关生化指标进行测定。结果表明,分子质量<3 000 Da肝肽(GSLP-Ⅲ)对ADH激活率最高(83.53%),其对1,1-二苯基-2-三硝基苯肼自由基(DPPH·)、羟自由基(·OH)和超氧阴离子自由基(O2-·)清除率均>83.50%,还原力最高(吸光度值0.44),在53%vol白酒中溶解度较高(94.35%)。与白酒组小鼠相比,大鲵肝肽酒组小鼠肝脏乙醇脱氢酶(ADH)、乙醛脱氢酶(ALDH)、超氧化物歧化酶(SOD)活力、还原型谷胱甘肽(GSH)含量分别提高66.58%、26.84%、15.84%、36.92%,丙二醛(MDA)、甘油三酯(TG)含量分别降低17.37%、26.39%,血清谷丙转氨酶(ALT)和谷草转氨酶(AST)活性分别降低21.82%、23.61%,说明大鲵肝肽酒对小鼠酒后肝脏具有一定的保护作用。

关键词:大鲵肝脏;多肽;大鲵肝肽酒;抗氧化活性;护肝

我国具有传统深厚的酒文化,酒在生活中成为不可缺少的饮品。乙醇进入机体后,10%由肾脏和肺排出,90%在肝脏内进行代谢和分解[1],在肝脏中由乙醇脱氢酶(alcohol dehydrogenase,ADH)氧化为乙醛,乙醛经乙醛脱氢酶(acetaldehyde dehydrogenase,ALDH)氧化为乙酸进入三羧酸循环,最终代谢为二氧化碳和水[2]。饮酒过量会产生酒精中毒,长期嗜酒会形成酒精依赖症[3],长期饮酒诱发肝硬化以及肝癌[4],还会引起肥胖、高血脂症、动脉硬化等[5]。世界卫生组织指出,酒精性肝损伤已成为仅次于病毒性肝炎的第二大肝脏疾病[6]。如何降低饮酒对肝脏的损伤成为当前研究的热点问题。研究表明,生物小分子肽具有较高的抗氧化、抗肿瘤、抗衰老活性、易吸收[7],促进乙醇脱氢酶及乙醛脱氢酶活性,能加快酒精代谢速率,减少代谢产物对肝组织的损害作用[8]。LI G M等[9]研究发现,玉米肽具有抗氧化、抗高血压、保肝、促进酒精代谢等功能;陈頔等[10]用鱼皮低聚肽灌胃酒精性肝损伤小鼠,发现鱼皮低聚肽对酒精性肝损伤小鼠具有保护作用。

大鲵(Andrias davidianus)属大型两栖纲、有尾目、隐鳃鲵科,在地球上有3.5亿年生活史,具有极强的耐饥能力和抗逆境能力[11]。大鲵肝脏占体质量的3%~5%,是大鲵加工的主要副产物[12]。大鲵肝脏具有较高营养价值,含有丰富的蛋白质和酶[13],富含不饱和脂肪酸[14],但大鲵肝脏腥味重,难以加以利用,多作为废弃物直接丢弃,将肝脏制备小分子肽,提高大鲵附加值[15]。近年来,将多肽与酒结合制备多肽保健酒是多肽利用的重要途径,关于多肽酒的研究报道越来越多,如植物源的多肽酒:山药肽酒[16]、柠檬肽酒[17],蚕豆肽酒[18]等;动物物源多肽酒:海参肽酒[19]、甲鱼肽酒[20]、鹿茸血肽酒[21]、大鲵肽酒[22]、牡蛎肽酒[23]等,但是以大鲵肝肽(giant salamander liver peptide,GSLP)制备的大鲵肝肽酒研究较少。

本研究以大鲵肝脏与白酒为原料制备大鲵肝肽酒,通过酶解法制备肝肽,对其体外乙醇脱氢酶(ADH)激活活性、体外抗氧化活性和溶解度进行测定,并测定大鲵肝肽酒对小鼠肝脏乙醇脱氢酶(ADH)和乙醛脱氢酶(ALDH)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)活力与还原型谷胱甘肽(reduced glutathione,GSH)、丙二醛(malonaldehyde,MDA)、甘油三酯(triglyceride,TG)含量及血清中谷丙转氨酶(alanine aminotransferase,ALT)和谷草转氨酶(aspartate aminotransferase,AST)活性的影响,以期探讨大鲵肝肽酒对酒后小鼠的肝脏保护作用,为大鲵肝脏高值化利用和多肽酒的开发提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

1.1.1 材料

大鲵肝脏:陕西鲵生元科技有限公司;53%vol酱香型白酒:贵州茅台酒厂保健酒业有限公司;无特定病原体(specific pathogen free,SPF)级雄性昆明种小鼠:4周龄,体质量(22±2)g,实验动物使用许可证号SCXK(陕)2018-001,由西安交通大学医学院部实验动物中心提供,饲养条件为温度(22±2)℃,湿度50%~60%,昼夜交替。

1.1.2 试剂

风味蛋白酶(酶活40000U/g)、胰蛋白酶(酶活4000U/g):广西南宁庞博生物工程有限公司;碳酸氢钠、柠檬酸:天津市富宇精细化工有限公司;乙醇脱氢酶(ADH)(1.0 U/mL):美国Sigma公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)、邻苯三酚、三羟甲基氨基甲烷:上海源叶生物科技有限公司;硫酸亚铁、水杨酸:天津市北联精细化学品开发有限公司;铁氰化钾:成都市科龙化学试剂厂;三氯乙酸:上海精析化工科技有限公司;三氯化铁:天津市福晨化学试剂厂;维生素C(vitamin C,VC):成都市科龙化工试剂厂;二喹林甲酸(bicinchoninic acid,BCA)法微量蛋白定量试剂盒、血乙醇(blood ethanol,ALC)试剂盒、谷丙转氨酶(ALT)试剂盒、谷草转氨酶(AST)试剂盒、超氧化物歧化酶(SOD)试剂盒、还原型谷胱甘肽(GSH)试剂盒、丙二醛(MDA)试剂盒、甘油三酯(TG)试剂盒、乙醇脱氢酶(ADH)试剂盒、乙醛脱氢酶(ALDH)试剂盒:南京建成生物工程研究所。本研究所用试剂均为分析纯。

1.2 仪器与设备

DK-98-Ⅱ恒温水浴锅:天津市泰斯特仪器有限公司;TGL-20M冷冻离心机:湖南湘仪离心机仪器有限公司;LC-800低速台式离机:科大创新股份有限公司中佳分公司;Xinyi-100F真空冷冻干燥机:宁波新艺超声设备有限公司;Epoch 2酶标仪:美国BioTek公司;UV-1750紫外-可见分光光度计:日本岛津仪器公司;PE28型pH计:梅特勒-托利多仪器有限公司;陶瓷膜过滤机、纳滤膜过滤机及超滤膜(截留分子质量3 000 Da):南京艾宇琦膜科技有限公司。

1.3 方法

1.3.1 大鲵肝肽酒的加工工艺流程及操作要点

操作要点:

原料预处理:流水清洗大鲵肝脏,按料液比1∶5(g∶mL)添加0.9%生理盐水浸泡30 min,1%酵母发酵液(按大鲵肝脏质量1%酵母粉和2%白砂糖在37 ℃活化1 h)浸泡30 min,清洗沥干,绞碎制成肝糜。

酶解:在肝糜中加入1%的风味蛋白酶,以肝糜和蒸馏水的料液比为1∶1(g∶mL)添加蒸馏水、于pH 7.0、53 ℃条件下搅拌酶解4 h;再添加0.5%胰蛋白酶,于pH 8.0、37 ℃条件下酶解3 h;灭酶活(95 ℃、10 min)。

离心、脱色脱腥:酶解液离心(5 500 r/min、15 min),去除上清液中油脂及沉淀,收集上清液。在上清液中加入1%活性炭,50 ℃、0.08 Pa下抽真空,搅拌脱色脱腥1 h。

过滤、超滤:用过压滤机脱活性炭后陶瓷膜过滤,得到分子质量<10 000 Da多肽的酶解液。用截留分子质量3 000 Da的超滤膜对其进行超滤分级分离,得到3种不同分子质量段的多肽液。

冷冻干燥:在温度-50~20 ℃、真空度13~40 Pa条件下,经冷冻干燥后制得大鲵肝肽粉:GSLP-Ⅰ(分子质量>10 000 Da)、GSLP-Ⅱ(分子质量3 000~10 000 Da)、GSLP-Ⅲ(分子质量<3 000 Da)。

调配:于1%大鲵肝肽粉中,按料液比1∶100(g∶mL)添加53%vol酱香型白酒,即得大鲵肝肽酒。

1.3.2 不同分子质量大鲵肝肽体外ADH激活活性

大鲵肝肽ADH激活率参考刘鹏[24]的方法进行测定,其计算公式如下:

式中:A1为样品反应初始的OD340nm值;A2为样品反应结束的OD340nm值。

1.3.3 不同分子质量大鲵肝肽体外抗氧化活性测定

DPPH自由基(DPPH·)清除率的测定[25]:将不同分子质量肝肽加蒸馏水溶解,配制样品质量浓度为10.0 mg/mL。取3 mL样品溶液于试管中,加入3 mL 0.1 mmol/L DPPH溶液,振荡混匀后避光放置30 min,在波长517 nm处测吸光度值,用蒸馏水调零,抗坏血酸溶液(0.5 mg/mL)作阳性对照。平行测定吸光度值3次。DPPH·清除率计算公式如下:

式中:A0为蒸馏水-DPPH溶液的吸光度值;A1为样品-DPPH溶液的吸光度值;A2为样品-乙醇溶液的吸光度值。

羟自由基(·OH)清除率的测定[26]:将不同分子质量肝肽加蒸馏水溶解,配制样品质量浓度为10.0mg/mL。取2mL样品溶液于试管中,加2 mL 9 mmol/L FeSO4溶液、2 mL 9 mmol/L水杨酸乙醇溶液,再加2 mL 9 mmol/L H2O2溶液,于37 ℃水浴条件下加热30 min,待冷却后离心。以蒸馏水作为空白对照,抗坏血酸溶液(0.5 mg/mL)作阳性对照。在波长510 nm处测定吸光度值,实验重复3次,·OH的清除率计算公式如下:

式中:A0为蒸馏水-水杨酸乙醇吸光度值;A1为样品-水杨酸乙醇溶液吸光度值;A2为加入样品溶液但不加水杨酸乙醇溶液吸光度值。

超氧阴离子自由基(O-2·)清除率测定[27]:采用邻苯三酚自氧化法测定,将不同分子质量肝肽加蒸馏水溶解,配制样品质量浓度为10.0 mg/mL。取1 mL样品溶液于试管中,各加入4.5 mL 50 mmol/L Tris-HCl缓冲液和0.1 mL 3 mmol/L邻苯三酚溶液充分混匀,于25 ℃水浴反应10 min,加入1 mL 8 mmol/L HCl溶液终止反应。在波长320 nm处测定吸光度值,以蒸馏水作为空白对照,抗坏血酸溶液(0.5 mg/mL)作为阳性对照。实验重复3次,O-2·清除率计算公式如下:

式中:A0为不加样品溶液,加邻苯三酚溶液的吸光度值;A1为加样品溶液和邻苯三酚溶液的吸光度值;A2为加样品溶液但不加邻苯三酚溶液的吸光度值。

总还原力的测定[28]:将不同分子量肝肽加蒸馏水溶解,配制样品质量浓度为10.0 mg/mL。取样品溶液2 mL,加入2 mL 0.2 mol/L pH 6.6磷酸盐缓冲液和2 mL 1%铁氰化钾溶液充分混匀后,于50 ℃水浴条件下静置20 min后,加入10%三氯乙酸2 mL,充分混合,4 000 r/min离心10 min,取2.5 mL上清液,再加入2 mL蒸馏水和0.5 mL 0.1%三氯化铁后混匀,室温条件下静置10 min,在波长700 nm处测定吸光度值,实验重复3次,以蒸馏水作为空白对照,抗坏血酸溶液(0.5 mg/mL)作为阳性对照。

1.3.4 不同分子质量大鲵肝肽溶解度的测定

称取0.250 0 g 3个不同分子质量大鲵肝肽粉置入50 mL于离心管中,再分别加入酒精度为12%vol、35%vol、45%vol、53%vol的酱香型白酒25 mL摇匀,室温静置7 d后4 000 r/min离心15 min,上清液倒入坩锅置于105 ℃烘箱,烘至恒质量[29],计算溶解度,其计算公式如下:

式中:m为坩锅的质量,g;M为坩锅和溶解肽粉的质量,g;w为肽粉的质量,g。

1.3.5 大鲵肝肽酒的动物实验

遵循实验动物伦理规程和标准,取昆明种雄性小鼠45只,经7 d适应期,按随机数字标法分3组,即空白对照组、白酒组、大鲵肝肽酒组,每组15只。空白对照组小鼠每日灌胃生理盐水(0.12 mL/10 g体质量),白酒组小鼠每日灌胃53%vol酱香型白酒(0.12 mL/10 g体质量)[30],大鲵肝肽酒组小鼠每日灌胃最适条件制备的大鲵肝肽酒(0.12 mL/10 g体质量),连续灌胃10 d。

1.3.6 样品的采集及处理

末次灌胃2 h后从每个实验组中各取3只小鼠,眼球取血(4 ℃、3 000 r/min离心15 min,取上层血清保存于-80 ℃冰箱中),解剖小鼠取肝脏,在4 ℃的生理盐水中反复冲洗,滤纸吸干后称取肝脏质量,剪取一部分肝组织,用10%甲醛溶液固定;剩余肝组织-80 ℃冰箱保存,其他小鼠用于血液和肝脏的生化指标检测。在实验期间,每日固定时间对小鼠灌胃前进行称量并记录,及时调整给酒灌胃体积,观察小鼠有无死亡、精神状态、活动能力等。

1.3.7 生化指标的测定

(1)血液乙醇含量

根据血乙醇试剂盒的说明书测定小鼠血液乙醇含量。

(2)肝脏生化指标

以9倍肝组织体积加入预冷生理盐水,冰浴条件下匀浆制成10%肝组织匀浆,离心(3 000 r/min、4 ℃、20 min),取上清液,按照试剂盒的说明书测定小鼠肝脏SOD活力、GSH、MDA、TG含量,以及乙醇代谢相关酶ADH、ALDH活力。

(3)血清生化指标

根据试剂盒的说明书测定小鼠血清的谷丙转氨酶(ALT)和谷草转氨酶(AST)活力。

1.3.8 数据分析

采用OriginPro 2018软件进行绘图,SPSS 20.0软件进行数据统计分析,P<0.05,表示差异显著。

2 结果与分析

2.1 不同分子质量肝肽对ADH激活率的影响

ADH是一种含锌金属蛋白酶,主要存在于肝脏,是酒精代谢最主要的参与酶和代谢酶,不同分子质量的多肽对ADH激活率不同[31]。不同分子质量肝肽对体外ADH的激活作用见图1。

图1 不同分子质量肝肽对体外乙醇脱氢酶的激活作用
Fig.1 Activation of liver peptides with different molecular mass on alcohol dehydrogenase in vitro

不同小写字母表示差异显著(P<0.05)。下同。

由图1可知,在相同质量浓度下,不同分子质量的肝肽对体外ADH激活作用具有显著性差异(P<0.05),对ADH激活率从大到小排序为:GSLP-Ⅲ>GSLP-Ⅰ>GSLP-Ⅱ,其中,GSLP-Ⅲ对ADH激活率最高,达83.53%,GSLP-Ⅰ激活率为73.47%,GSLP-Ⅱ激活率最低,为61.53%。结果表明,大鲵肝肽对体外ADH的激活作用并不受分子质量大小的影响,这与张帅[32]的研究结果一致。

2.2 不同分子质量肝肽体外抗氧化活性测定

不同分子质量肝肽的体外抗氧化活性测定结果见表1。

表1 不同分子质量肝肽体外抗氧化活性
Table 1 Antioxidant activity in vitro of liver peptides with different molecular mass

注:同列不同小写字母表示差异显著(P<0.05)。下同。

由表1可知,VC的抗氧化能力最强,不同分子质量肝肽对DPPH·、·OH和均具有较强清除能力,按抗氧化能力大小对肝肽样品排序为:GSLP-Ⅲ>GSLP-Ⅱ>GSLP-Ⅰ。其中,GSLP-Ⅲ肝肽对DPPH·、·OH和清除率均达到了83.50%以上,显著高于其他肝肽组分;GSLP-Ⅲ肝肽还原力显著高于其他肝肽组分(P<0.05)。在相同质量浓度下,肝肽分子质量越小,体外抗氧化能力越强,这是因为疏水性氨基酸和芳香族氨基酸含量增加,具有抗氧化性的氨基酸增加[33]

2.3 大鲵肝肽的溶解度

不同分子质量肝肽在不同酒精度白酒中的溶解度见表2。

表2 不同分子质量肝肽在不同酒精度白酒中的溶解度
Table 2 Solubility of liver peptides with different molecular mass in Baijiu with different alcohol content%

由表2可知,不同分子质量肝肽在不同酒精度白酒中的溶解度不同,在同一分子质量肝肽条件下,随着酒精度的增加,溶解度逐渐降低。在同一酒精度的条件下,分子质量小的肝肽在白酒中的溶解度显著高于分子质量大的肝肽(P<0.05)。GSLP-Ⅲ肝肽在12%vol~53%vol酒精中溶解度均>94.00%。不同分子质量肝肽,在不同酒精度中溶解度不同,究其原因可能是,肽的分子质量大小、肽的结构及端基极性基团决定了肽在酒中的溶解度[34]

2.4 大鲵肝肽酒对小鼠血液乙醇含量及肝脏代谢酶活性的影响

饮酒后,大部分的酒精经胃肠道进入血液,使血液中乙醇含量升高,在60 min左右达到最高[35],最终进入肝脏进行分解代谢,酒精分解代谢与肝脏中的乙醇脱氢酶(ADH)和乙醛脱氢酶(ALDH)的活力有密切关系。小鼠饮酒后2 h血乙醇含量及肝脏中的乙醇脱氢酶(ADH)和乙醛脱氢酶(ALDH)的活性见表3。

表3 大鲵肝肽酒对小鼠血乙醇含量及肝脏代谢酶活性的影响
Table 3 Effect of Andrias davidianus liver peptide wine on ethanol concentration of blood and metabolic enzyme activity of mouse liver

注:“/”表示未检出。

由表3可知,与空白对照组相比,白酒组、肝肽酒组的ADH活性分别降低55.77%、26.33%,ALDH活性分别降低25.33%、5.29%,白酒组、肝肽酒组ADH活力显著低于空白对照组(P<0.05),肝肽酒组ALDH活力与空白组无显著差异(P>0.05);与白酒组相比,肝肽酒组的ADH和ALDH活性分别显著升高66.58%、26.84%(P<0.05),血液乙醇含量显著降低14.29%(P<0.05),说明大鲵肝肽酒在一定程度上具有激活ADH和ALDH的活性,可以加速酒精代谢,降低血乙醇含量。

2.5 大鲵肝肽酒对小鼠肝脏氧化应激代谢酶活性的影响

氧化应激是体内氧化与抗氧化作用失衡,是由自由基在体内产生的一种负面作用。长期大量饮酒后,酒精在肝组织代谢会超过肝脏的正常生理代谢能力,使肝组织发生脂质过氧化,降低谷胱甘肽(GSH)含量和超氧化物歧化酶(SOD)酶活,增加丙二醛(MDA)和甘油三脂(TG)含量[36]。大鲵肝肽酒对小鼠肝脏氧化应激谢酶活性的影响见表4。

表4 大鲵肝肽酒对小鼠肝脏氧化应激代谢酶活性的影响
Table 4 Effect of Andrias davidianus liver peptide wine on oxidative stress metabolic enzyme activity of mouse liver

由表4可知,与空白组相比,白酒组、肝肽酒组的SOD活性分别显著降低30.78%、19.82%(P<0.05),GSH含量分别显著降低47.58%、28.23%,MDA含量分别显著升高76.03%、45.45%(P<0.05),TG含量分别显著升高140.00%、76.67%(P<0.05)。与白酒组相比,肝肽酒组的SOD活力和GSH含量分别显著升高15.84%、36.92%(P<0.05),MDA、TG含量分别显著降低17.37%、26.39%(P<0.05),说明大鲵肝肽酒在一定程度上可提高小鼠肝脏SOD活力和GSH含量,降低脂质过氧化物MDA和TG含量,减轻肝脏的氧化应激反应。

2.6 大鲵肝肽酒对小鼠血清转氨酶指标的影响

谷丙转氨酶(ALT)和谷草转氨酶(AST)是评价肝受损的重要指标[37],肝细胞发生异常时,可引起炎症反应和肝细胞坏死,细胞膜的通透性增加,使肝细胞ALT和AST进入血液。大鲵肝肽酒对小鼠血清ALT和AST活性的影响见图2。

由图2可知,与空白对照组相比,白酒组、肝肽酒组小鼠血清中ALT活性分别显著升高了107.33%、62.09%(P<0.05),AST活性分别显著升高108.46%、58.24%(P<0.05),白酒组和肝肽酒组小鼠血清中ALT和AST的活性均显著高于空白对照组(P<0.05);与白酒组相比,肝肽酒组小鼠血清中ALT和AST的活性分别显著降低21.82%、23.61%(P<0.05)。说明大鲵肝肽酒在一定程度上能降低灌胃酒精小鼠血清中ALT和AST活性。

图2 大鲵肝肽酒对小鼠血清谷丙转氨酶(A)和谷草转氨酶(B)活性的影响
Fig.2 Effect of Andrias davidianus liver peptide wine on alanine aminotransferase (A) and aspartate aminotransferase (B)activity of mouse serum

3 结论

本研究以大鲵肝脏和白酒为原料制备大鲵肝肽酒。利用酶解法和膜分离法制备了不同分子质量的肝肽,研究了其体外抗氧化活性及其在不同酒精度白酒中的溶解度,并测定大鲵肝肽酒对小鼠肝脏损伤相关的各项生化指标的影响。结果表明,分子质量<3 000 Da(10 mg/mL)的大鲵肝肽体外对ADH激活率最高,为83.53%,对DPPH·、·OH和清除率均>83.50%,且具有较强的还原力(吸光度值0.440)。分子质量越小,在白酒中溶解度越大,其中分子质量<3 000 Da的肝肽溶解度均达到94%以上。与灌胃白酒组小鼠相比,大鲵肝肽酒组小鼠肝脏ADH、ALDH、SOD活力及GSH含量显著提高(P<0.05),分别提高66.58%、26.84%、15.84%,36.92%,肝脏MDA、TG含量显著降低(P<0.05),分别降低17.37%、26.39%,血清ALT和AST活性显著降低(P<0.05),分别降低21.82%、23.61%。大鲵肝肽酒能增强机体抗氧化能力,减轻肝脏的氧化应激反应;提高乙醇、乙醛代谢酶的活性,降低乙醇对肝细胞损伤。

参考文献:

[1]CEDERBAUM A I.Alcohol metabolism[J].Clin Liver Dis,2012,16(4):667-685.

[2]TESCHKE R.Alcoholic liver disease: alcohol metabolism,cascade of molecular mechanisms,cellular targets,and clinical aspects[J].Biomedicines,2018,6(4):106.

[3]HYUN J,HAN J,LEE C,et al.Pathophysiological aspects of alcohol metabolism in the liver[J].Int J Mol Sci,2021,22(11):5717.

[4]李强武,朱质斌,戴炜.长期饮酒与乙肝病毒感染对肝脏功能影响的研究进展[J].内科,2020,15(1):64-66.

[5]KARLSEN T H,SHERON N,ZELBER-SAGI S,et al.The EASL-Lancet liver commission: protecting the next generation of Europeans against liver disease complications and premature mortality[J].Lancet,2022,399(10319):61-116.

[6]CHEN Y L,OUYANG X S,HOQUE R,et al.β-Hydroxybutyrate protects from alcohol-induced liver injury via a Hcar2-cAMP dependent pathway[J].J Hepatology,2018,69(3):687-696.

[7]SARMADI B H,ISMAIL A.Antioxidative peptides from food proteins:a review[J].Peptides,2010,31(10):1949-1956.

[8]肖楚乔.鸡肉蛋白源ADH激活肽的制备及对小鼠酒精性肝损伤的保护机制研究[D].广州:华南理工大学,2020.

[9]LI G M,LIU W Y,WANG Y Q,et al.Functions and applications of bioactive peptides from corn gluten meal[J].Adv Food Nutr Res,2019,87:1-41.

[10]陈頔,殷继永,黄建.鱼皮低聚肽对小鼠急性酒精性肝损伤的保护作用[J].中国食物与营养,2021,27(5):47-52.

[11]李斌,闫润堃,普畅畅,等.洛阳伊水大鲵肌肉营养成分分析[J].河北渔业,2021(2):12-17.

[12]赵萍,陈小华,刘俊霞,等.生姜/料酒脱腥过程中大鲵肝挥发性有机物动态变化[J].食品与发酵工业,2021,47(24):164-172.

[13]GENG X F,GUO J L,ZANG X Y,et al.Proteomic analysis of eleven tissues in the Chinese giant salamander(Andrias davidianus)[J].Sci Rep,2019,9(1):16415.

[14]胡代花.超声辅助提取大鲵肝脏油脂及其脂肪酸组成分析[J].中国油脂,2017,42(6):12-15.

[15]马东林,杨絮,郭全友,等.大鲵营养组成、功能成分及加工利用研究进展[J].食品与发酵工业,2020,46(24):242-248.

[16]李小强.山药蛋白酶解多肽液及多肽酒制备工艺研究[D].武汉:湖北工业大学,2012.

[17]胥霞.柠檬多肽制备及其多肽酒发酵工艺的研究[D].成都:西华大学,2019.

[18]杨希娟,党斌,耿贵工,等.酶解蚕豆蛋白制备多肽的工艺优化及多肽酒的发酵[J].中国农业大学学报,2013,18(2):158-166.

[19]董慧明,张月辉,陈玉威,等.海参酒中海参多肽的提取工艺研究[J].山东化工,2014,43(1):20-21,24.

[20]殷金莲,徐怀德.甲鱼多肽酒发酵工艺及抗氧化性分析[J].食品工业,2019,40(2):77-80.

[21]黄治国,罗惠波,卫春会,等.鹿茸血酒加工工艺研究[J].中国酿造,2009,28(7):166-168.

[22]陈娟,喻仕瑞,朱思洁,等.大鲵肽酱香酒酶解工艺优化及抗氧化活性研究[J].中国酿造,2020,39(7):101-106.

[23]车帅,刘楚怡,王长伟,等.一种含有牡蛎肽保健酒的功能评价[J].中国酿造,2021,40(5):97-10.

[24]刘鹏.低分子量促乙醇代谢玉米肽制备与蛋白成分对活性贡献关系研究[D].广州:华南理工大学,2015.

[25]罗敏,陈德经,韩豪,等.硒化米胚多糖的抗氧化性[J].食品科学,2018,39(19):58-63.

[26]杨慧,陈德经,陈海涛,等.大鲵皮肤色素的性质及功能研究[J].食品研究与开发,2019,40(9):39-45.

[27]ZENG N,ZHANG G W,HU X,et al.Mechanism of fisetin suppressing superoxide anion and xanthine oxidase activity[J].J Funct Foods,2019,11(58):1-10.

[28]SIDDHURAJU P,MOHAN P S,BECKER K.Studies on the antioxidant activity of Indian laburnum(Cassia fistula L.):a preliminary assessment of crude extracts from stem bark,leaves,flowers and fruit pulp[J].Food Chem,2002,79(1):61-67.

[29]韩建春,张敏.大豆多肽饮料的加工工艺[J].食品科学,2004,25(4):200-203.

[30]苗明三,康乐,方晓艳,等.酒精性肝损伤动物模型制备规范(草案)[J].中华中医药杂志,2018,33(3):1000-1003.

[31]ZHAO R J,HUO C Y,QIAN Y,et al.Ultra-high-pressure processing improves proteolysis and release of bioactive peptides with activation activities on alcohol metabolic enzymes in vitro from mushroom foot protein[J].Food Chem,2017,231:25-32.

[32]张帅.河蚬酶解产物解酒护肝活性的研究[D].湛江:广东海洋大学,2019.

[33]胡廷,青维,李美凤,等.大鲵多肽体外抗氧化活性研究[J].食品科技,2018,43(6):254-259.

[34]于泓鹏,陈运生,吴克刚,等.罗非鱼水解多肽的乳化性及乳化稳定性[J].食品科技,2015,40(2):328-333.

[35]SHI Y T,YU F J,WU Y,et al.Identification of a novel peptide that activates alcohol dehydrogenase from crucian carp swim bladder and how it protects against acute alcohol-induced liver injury in mice[J].J Pharmaceut Biomed,2022,207:114426.

[36]JING J,CUI Z,ZHANG X,et al.Protective Effect of extract of Corbicula fluminea on acute chemical-induced liver injury mice[J].China Pharmaceuticals,2009,18(1):6-7.

[37]ELISABETTA C,TOMMASO M,ANDREA G.Pathogenesis of alcoholic liver disease:role of oxidative metabolism[J].World J Gastroen,2014,20(47):17756-17772.

Preparation of Andrias davidianus liver peptide wine and its protective effect on mouse liver after drinking

ZENG Yunhao1,SU Wen1,2,ZHENG Xiaoli1,WANG Jinghua3,CHEN Dejing1,2*
(1.College of Biological Sciences and Engineering,Shaanxi University of Technology,Hanzhong 723001,China;2.Key Laboratory of Resource Biology,Shaanxi University of Technology,Hanzhong 723001,China;3.Hanzhong City Science and Technology Resource Coordination Center,Hanzhong 723001,China)

Abstract:The giant salamander liver peptide(GSLP)wine was prepared with Andrias davidianus liver and Baijiu as raw materials.Liver peptides with different molecular mass were prepared by enzymatic hydrolysis,and the in vitro alcohol dehydrogenase (ADH)activation activity,in vitro antioxidant activity and solubility were measured.Mice were administrated with normal saline, Baijiu and A.davidianus liver peptide wine,respectively,and the related biochemical indexes in the liver and serum of mice were determined.The results showed that the liver peptide with molecular weight<3 000 Da(GSLP-Ⅲ) had the highest ADH activation rate (83.53%),the scavenging rates of 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl free radical (DPPH·),hydroxyl radical(·OH)and superoxide anion free radical(O2-·)were all>83.50%,the reducing power was the highest(the absorbance value was 0.44),and the solubility in Baijiu(53%vol)was high(94.35%).Compared with the mice in Baijiu group,the ADH,acetaldehyde dehydrogenase(ALDH),superoxide dismutase(SOD)activity and reduced glutathione(GSH)content of mice liver treated with A.davidianus liver peptide wine group increased by 66.58%,26.84%,15.84%and 36.92%,respectively.But the malondialdehyde(MDA)content,triglyceride(TG)content,alanine aminotransferase(ALT)activity and aspartate transaminase(AST)activity of serum decreased by 17.37%,26.39%,21.82%and 23.61%,respectively,indicating A.davidianus liver peptide wine had certain protective effect on mouse liver after drinking.

Key words:Andrias davidianus liver;polypeptide;Andrias davidianus liver peptide wine;antioxidant activity;liver protection

中图分类号:TS262.3

文章编号:0254-5071(2023)02-0120-06

doi:10.11882/j.issn.0254-5071.2023.02.020

引文格式:曾允灏,苏文,王景华,等.大鲵肝肽酒制备及其对小鼠酒后肝脏保护作用研究[J].中国酿造,2023,42(2):120-125.

收稿日期:2022-07-22

修回日期:2022-09-18

基金项目:陕西理工大学“市校共建”科研专项(SXZC202101)

作者简介:曾允灏(1997-),男,硕士研究生,研究方向为蛋白多肽。

*通讯作者:陈德经(1961-),男,教授,硕士,研究方向为食品生物技术。