海藻糖与酿酒酵母乙醇耐受性相关性的研究进展

何迎粉1,何荣荣1,刘敦华1,孙 悦2*

(1.宁夏大学 农学院,宁夏 银川 750021;2.宁夏大学 葡萄酒学院,宁夏 银川 750021)

摘 要:酿酒酵母应用领域较广,在发酵过程中高浓度酒精通过破坏其细胞结构,增加酿酒酵母细胞膜通透性,胞内成分外泄,从而导致酿酒酵母活性下降。海藻糖在酿酒酵母细胞中作为保护剂,能够维持细胞膜完整性,保护菌体蛋白和核酸物质,增强酿酒酵母乙醇耐受性。该文主要论述内源海藻糖以及外源海藻糖与酿酒酵母乙醇耐受性的关系,旨在为提高酿酒酵母的乙醇耐受性提供参考。

关键词:酿酒酵母;乙醇耐受性;海藻糖

酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)是对人类有益的一类微生物,常被用来制作面包、啤酒和葡萄酒等发酵食品,除此之外,其也广泛应用在溶剂、乳化剂和燃料等工业领域[1]。酿酒酵母因具有发酵速度快和产酒精浓度高等优点而成为学者研究的重点。但在发酵过程中,酿酒酵母细胞受到乙醇、酸度、渗透压和营养成分不足等因素的影响[2],生长代谢受到抑制,其中乙醇胁迫是影响较大的因素之一[3]

酿酒酵母细胞中含有许多抵御乙醇胁迫的成分,如菌体海藻糖[4]、与细胞膜流动性有密切联系的脂肪酸[5]、与菌体蛋白相关的氨基酸等[6]。其中海藻糖是酿酒酵母在乙醇胁迫下产生的重要应激产物,能够特异性保护菌体蛋白质、生物膜和核酸等大分子结构[7]。海藻糖发挥的作用是双重的:一是海藻糖取代水并与磷脂极性基团结合来保持膜结构的完整性;二是海藻糖还可以起到伴侣蛋白作用,抑制变性蛋白质聚集,为蛋白质复性提供能量[8]。海藻糖除了提高酿酒酵母的乙醇胁迫外,在其他不利环境(如高温、冷冻、剪切力和有毒物质)中也起着至关重要的作用[9]。本文对乙醇胁迫下酿酒酵母细胞的耐受机制及海藻糖与酿酒酵母乙醇胁迫的关系进行综述,旨在为提高酿酒酵母的乙醇耐受性提供参考。

1 酿酒酵母的乙醇耐受性机理

乙醇是酿酒酵母发酵生成的主要副产物,高浓度乙醇对酵母细胞会产生抑制作用,酵母菌则产生一系列的应激反应来保证正常的生长代谢,这种应对机制即为酿酒酵母乙醇耐受性[10]。乙醇对酵母细胞的影响主要体现为降低酵母细胞存活率和细胞生长速率,进而导致发酵过程的终止[11]。因此,研究耐酒精酿酒酵母的筛选和发酵特性的评价具有重要意义。

1.1 酵母细胞结构与乙醇耐受性的关系

1.1.1 酵母细胞壁与乙醇耐受性的关系

细胞壁的完整性在酿酒酵母乙醇耐受性发挥着重要作用。酿酒酵母细胞壁的主要成分是D-葡萄糖、D-甘露糖、蛋白质、几丁质和极少量的脂类物质和矿物质。在高浓度酒精的环境下,细胞壁中的成分会发生改变以抵御酒精等不利环境,减轻对细胞结构的破坏[12]。葡萄糖和甘露糖构成的细胞壁具有一定的韧性,细胞壁蛋白固定在细胞壁上,可以起到防止酒精溶解酵母细胞的作用[13]。细胞壁麦角固醇和多种脂肪酸可以调节细胞膜的渗透性,提高酿酒酵母的存活率[14]

除酿酒酵母细胞壁结构外,细胞壁合成基因与乙醇耐受性也存在一定的关联。这些基因包括葡聚糖合成基因、β-1,3葡聚糖合成基因FKS1β-1,6葡聚糖合成基因KRE6[15],细胞壁蛋白基因SPl1和其他细胞壁基因BEM2PAT1ROM2VPS34ADA2[16]

1.1.2 细胞内膜系统与乙醇耐受性的关系

乙醇对酿酒酵母内膜系统产生毒害作用的部位有细胞膜、亲水蛋白、疏水蛋白和内质网[17],其主要目标是膜结构。高浓度乙醇会导致膜流动性和通透性增加,从而破坏膜完整性,酵母细胞可以通过改变膜结构来防止膜流化和稳定质膜[18],达到抵御乙醇压力的目的[19]

不饱和脂肪酸和麦角固醇是细胞膜的重要成分,ALEXANDRE H等[20]研究发现,当乙醇浓度升高时,麦角固醇含量也会增加。ARCHANA K M等[21]研究发现,在培养基中加入不饱和脂肪酸,酿酒酵母抵御乙醇毒害的能力会提高。除此之外,乙醇还通过减少生物分子的水化外壳的方式使其受到活性氧的攻击,在此过程中乙醇取代水并改变分子在细胞膜上的位置,最终破坏膜的结构和功能[22]

1.2 酿酒酵母自身遗传基因与乙醇耐受性的关系

酿酒酵母在高浓度乙醇中会做出一系列应激反应,与酿酒酵母乙醇耐受性密切相关的基因主要有:热激蛋白合成基因、与乙醇耐受性相关的内源基因、某些氨基酸的合成基因以及海藻糖合成酶基因[23]

1.2.1 热激蛋白合成基因

热激蛋白是酿酒酵母在胁迫条件下产生的特殊蛋白,热激蛋白合成基因主要有Hsp12Hsp30Hsp70Hsp78Hsp82Hsp104等。CHANDLER M等[24]采用脱氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)微阵列分析的方法研究酿酒酵母在体积分数5%酒精培养基中好氧培养物的基因,通过与原始菌株对比,经过酒精处理的酵母菌Hsp104Hsp26Hsp30Hsp70Hsp12的基因在转录水平上提高幅度较大,热激蛋白合成量较多。基因Hsp70具有稳定细胞膜结构、参与其他蛋白质的合成与折叠和抑制蛋白质分解的作用[25]。MARKS V D等[26]研究发现,酿酒酵母在乙醇胁迫下热激蛋白Hsp70家族基因SSE1SSA1SSA2表达上调。Hsp12是与细胞膜相关的蛋白质,在高浓度酒精中维持质膜完整性,Hsp104则充当变性蛋白质分解中的重塑剂[27]

1.2.2 酵母内源性基因

酵母内源性基因过表达可以提高酿酒酵母乙醇耐受性,逆代谢工程方法可以识别酿酒酵母潜在的与乙醇耐受性相关的基因靶点。HONG M E等[28]选择酵母内源性基因作为研究对象,采用逆代谢工程方法识别过表达基因靶点,其中基因靶点INO1DOG1HAL1和截短的MSN2基因与乙醇耐受性有着密切联系,将这四种质粒重组酵母进行乙醇耐受性实验,结果发现,这四种质粒过表达都能增强酵母乙醇耐受性,其中基因INO1过表达的效果最好。

1.2.3 氨基酸基因

酵母细胞中某些氨基酸在提高酿酒酵母乙醇耐受性发挥重要作用,如脯氨酸、精氨酸和色氨酸。脯氨酸主要通过促进GK蛋白的生成来提升酿酒酵母的乙醇耐受性[29],精氨酸可以抑制酵母体内活性氧(reactive oxygen species,ROS)的生成,从而对乙醇诱导的细胞壁、细胞膜和细胞内细胞器起到保护作用[30],HIRASAWA T等[31]研究发现,色氨酸合成基因(即TRP1TRP2TRP3TRP4TRP5)缺失则会导致酵母对乙醇胁迫更加敏感。

1.2.4 海藻糖合成酶基因

酿酒酵母乙醇耐受性与菌体海藻糖含量有着密切的联系,高浓度乙醇诱导海藻糖合成酶基因和降解酶基因的表达,促使酵母生成大量的海藻糖来抵御乙醇胁迫[24]。与海藻糖合成代谢密切相关的基因主要有海藻糖合成基因和海藻糖酶基因。海藻糖合成基因主要有TPS1TPS2TLS1;海藻糖酶基因主要有中性海藻糖酶基因NTH1NTH2和酸性海藻糖酶基因ATH1[8,32]。不同倍体酿酒酵母在高浓度酒精中的基因表达存在差异,ZHANG K等[33]通过转录组分析得出单倍体和三倍体酿酒酵母基因TPS1TPS2TLS1上调程度比基因NTH1NTH2ATH1上调程度高,从而使酿酒酵母积累更多海藻糖。酿酒酵母在不同时期的基因表达略有差异,YI C F等[34]研究发现,生长指数期的酿酒酵母基因NTH1NTH2表达下调,海藻糖分解量减少,海藻糖累积量增加。生长稳定期的酿酒酵母基因NTH1NTH2TPS1ATH1表达上调,TPS2表达下调,从而使酿酒酵母菌体海藻糖达到稳定趋势。

乙醇诱导海藻糖合成基因表达生成大量海藻糖,但过量海藻糖抑制热激蛋白发挥稳定蛋白质的作用,海藻糖酶基因表达使海藻糖降解,有利于发挥其他应激物质的保护作用[20]。因此,海藻糖合成基因和海藻糖酶基因共同赋予酿酒酵母抵御乙醇胁迫的能力。

2 海藻糖与酿酒酵母乙醇耐受性的相关性

海藻糖是由葡萄糖分子通过半缩醛羟基缩合构成,是一种非还原性二糖[9],海藻糖稳定性强,只有海藻糖酶才会将其分解成葡萄糖[35]。海藻糖具有高度水合能力和强稳定性等优势,在胁迫环境中起到维持生物大分子结构和功能的作用[11],是评价酵母乙醇耐受性的重要指标[36]

海藻糖是酵母在胁迫条件下的保护剂,酵母存活率随着菌体海藻糖累积量增加而增加[37-38]。当酵母处在致死浓度的乙醇中,海藻糖起到稳定酵母细胞膜、保护细胞质蛋白和修复变性蛋白的作用[8,39],还可以帮助菌体蛋白进行适当折叠和修复,防止蛋白质聚集和羰基化[22,40-41],通过取代酵母细胞膜上的水和乙醇,与脂质极性基团之间形成氢键,稳定膜结构[43]。除此之外,海藻糖在流体条件下可以维持脂质双分子层结构,海藻糖还是抵御细胞内部和外部乙醇毒性的重要物质之一,能够防止乙醇诱导的酵母细胞和羧基荧光素捕获的脂质体模型系统中的电解质流失[22]

2.1 酒精胁迫条件下酿酒酵母基因的变化

一些学者采用进化差异理论的诱变技术分离酵母突变菌株并进行乙醇冲击实验,结果发现,海藻糖合成基因TPS1TPS2TPS3TSL1表达水平呈现上调的趋势,这表明乙醇诱导海藻糖合成基因的表达以产生更多海藻糖抵御乙醇胁迫[44-45]。MAHMUD S A等[8]将中性海藻糖酶基因NTH1NTH2和酸性海藻糖酶基因ATH1同时敲除,将海藻糖酶缺陷菌株进行乙醇耐受性实验,结果表明,缺陷菌株海藻糖合成基因TPS1TPS2表达增强,缺陷菌株海藻糖含量比原始菌株FY834高,通过实验得出过表达基因TPS2产生的海藻糖含量高于过表达基因TPS1产生的海藻糖含量。

酿酒酵母在高浓度乙醇中,除了海藻糖合成基因表达增强外,中性海藻糖酶基因和酸性海藻糖酶基因表达也会增强。TAO X L等[45]以酿酒酵母敏感菌株Z5和耐酒精菌株SZ3-1为实验对象,用体积分数10%的酒精进行冲击实验,发现海藻糖合成基因TPS1TPS2TPS3TSL1表达水平呈现上调的趋势;除此之外,酸性海藻糖酶基因ATH1和中性海藻糖酶基因NTH1的表达水平也呈现上调趋势。

2.2 外源海藻糖与乙醇耐受性的关系

高浓度乙醇会损害酿酒酵母体内代谢过程,使酵母无法产生大量海藻糖来抵御乙醇胁迫[40]。酵母菌获取能量和营养物质的主要途径是培养基,一些学者研究发现,在培养基中加入海藻糖,可以有效提高酿酒酵母的乙醇耐受性[3,46]。刘琦等[47]将葡萄酒泥酵母中的海藻糖提取物以300 mg/L的添加量加入到模拟葡萄汁中,研究其对酵母乙醇耐受性的影响。结果表明,酵母在稳定期的生物量和存活率都大幅提高,说明海藻糖可以提高酵母的乙醇耐受性。由此得出,外源添加海藻糖提高酿酒酵母乙醇耐受性,可以有效改善酿酒酵母发酵特性,有利于酒精工业的发展。

3 展望

尽管DNA芯片、基因工程、基因组学和转录组学技术的发展,使得酵母的乙醇胁迫机制的研究已经深入到分子遗传学层次,但海藻糖对酿酒酵母的保护机理还未有统一定论。目前,国内外学者的研究重点主要集中在内源海藻糖提高酿酒酵母乙醇耐受性的机理,但对于外源海藻糖与酿酒酵母之间的结合位点和相互作用力以及其他作用机理研究较少。因此,研究外源海藻糖提高酿酒酵母乙醇耐受性对于发酵工业具有重要意义。

参考文献:

[1]MORARD M,LAURA G,ADAM A C,et al.Aneuploidy and ethanol tolerance in Saccharomyces cerevisiae[J].Front Genet,2019,10:doi:10.3389/fgene.2019.00082.

[2]CIBSON B R,LAWRENCE S J,LECLAIRE J P.Yeast responses to stresses associated with industrial brewery handling[J]. FEMS Microbiol,2007,31:535-569.

[3]张敏,毛健,黄桂东,等.清酒酿酒酵母酒精耐受机理的研究进展[J].食品工业科技,2012,33(20):342-34.

[4]VOORST F V,HOUGHTON-LARSEN J,LARS J,et al.Genome-wide identification of genes required for growth of Saccharomyces cerevisiae under ethanol stress[J].Yeast,2006,23(5):351-359.

[5]DONG S J,YI C F,LI H.Changes of Saccharomyces cerevisiae cell membrane components and promotion to ethanol tolerance during the bioethanol fermentation[J]. Int J Biochem Cell Biol,2015,69:196-203.

[6]SWINNEN S,GOOVAERTS A,SCHAERLAEKENS K,et al.Auxotrophic mutations reduce tolerance of Saccharomyces cerevisiae to very high levels of ethanol stress[J].Eukaryotic Cell,2015,14(9):884-897.

[7]赵志华,岳田利,王燕妮.海藻糖的生物学机制在酿酒活性干酵母(AADY)中的应用[J].食品研究与开发,2006,27(11):180-184.

[8]MAHMUD S A,HIRSASWA T,SHIMIZU H.Differential importance of trehalose accumulation in Saccharomyces cerevisiae in response to various environmental stresses[J].J Biosci Bioeng,2010,109(3):262-266.

[9]JULES M,BELTRAN G,FRANOIS J et al.New insights into trehalose metabolism by Saccharomyces cerevisiae:NTH2 encodes a functional cytosolic trehalase,and deletion of TPS1 reveals Ath1p-dependent trehalose mobilization[J].Appl Environ Microbiol,2008,74(3):605-614.

[10]SNOEK T,VERSTREPEN K J,VOORDECKERS K.How do yeast cells become tolerant to high ethanol concentrations?[J]. Curr Genet,2016,62(3):475-480.

[11]张强,郭元,韩德明.酿酒酵母乙醇耐受性的研究进展[J].化工进展,2014,33(1):187-192.

[12]BOORSMA A U,FRANCOIS J M.A study of the yeast cell wall composition and structure in response to growth conditions and mode of cultivation[J].Lett Appl Microbiol,2003,37:268-274.

[13]NOZAWA M,TAKAHASHI T,HARA S,et al.A role of Saccharomyces cerevisiae fatty acid activation protein 4 in palmitoyl-CoA pool for growth in the presence of ethanol[J].J Biosci Bioeng,2002,93:288-295.

[14]ABE F,HIRAKI T.Mechanistic role of ergosterol in membrane rigidity and cycloheximide resistance in Saccharomyces cerevisiae[J].BBA-Biomembranes,2009,1788(3):0-752.

[15]LAGORCE A,HAUSER N C,LABOURDETTE D,et al.Genome-wide analysis of the response to cell wall mutations in the yeast Saccharomyces cerevisiae[J].J Biol Chem,2003,278:20345-20357.

[16]TAKAHASHI T,SHIMOI H,ITO K.Identification of genes required for growth under ethanol stress using transposon mutagenesis in Saccharomyces cerevisiae[J].Mol Genet Genom,2001,265:1112-1119.

[17]STANLEY D,BANDARA A,FRASER S,et al.The ethanol stress response and ethanol tolerance of Saccharomyces cerevisiae[J].J Appl Microbiol,2010,109(1):13-24.

[18]DING J M,HUANG X W,ZHANG L M,et al.Tolerance and stress response to ethanol in the yeast Saccharomyces cerevisiae[J].Appl Microbiol Biotechn,2009,85(2):253-263.

[19]DONG S J,YI C F,LI H.Changes of Saccharomyces cerevisiae cell membrane components and promotion to ethanol tolerance during the bioethanol fermentation[J].Int J Biochem Cell Biol,2015,69:S135727 2515300509.

[20]ALEXANDRE H,ANSANAY-GALEOTE V,DEQUIN S,et al.Global gene expression during short-term ethanol stress in Saccharomyces cerevisiae[J].FEBS Lett,2001,498(1):98-103.

[21]ARCHANA K M,RAVI R,ANU-APPAIAH K A.Correlation between ethanol stress and cellular fatty acid composition of alcohol producing non-Saccharomyces in comparison with Saccharomyces cerevisiae by multivariate techniques[J].J Food Sci Technol,2015,52(10):6770-6776.

[22]TREVISOL E T V,PANEK A D,MANNARINO S C,et al.The effect of trehalose on the fermentation performance of aged cells of Saccharomyces cerevisiae[J].Appl Microbiol Biotechn,2011,90(2):697-704.

[23]CAO T S,CHI Z,LIU G L,et al.Expression of TPS1 gene from Saccharomycopsis fibuligera A11 in Saccharomyces sp.W0 Enhances trehalose accumulation,ethanol tolerance,and ethanol production[J]. Molecul Biotechn,2014,56(1):72-78.

[24]CHANDLER M,STANLEY G A,ROGERS P,et al.A genomic approach to defining the ethanol stress response in the yeast Saccharomyces cerevisiae[J].Ann Microbiol,2004,54(4):427-454.

[25]方华.海藻糖与热激蛋白共表达提高酿酒酵母乙醇耐受性[D].北京:北京化工大学,2015.

[26]MARKS V D,HOSS J,DANIEL E,et al.Dynamics of the yeast transcriptome during wine fermentation reveals a novel fermentation stress response[J].FEMS Yeast Res,2008,1:35-52.

[27]SAINI P,BENIWAL A,KOKKILIGADDA A,et al.Response and tolerance of yeast to changing environmental stress during ethanol fermentation[J].Process Biochem,2018,72(9):1-12.

[28]HONG M E,LEE K S,YU B J,et al.Identification of gene targets eliciting improved alcohol tolerance in Saccharomyces cerevisiae through inverse metabolic engineering[J].J Biotechnol,2010,149(1-2):52-59.

[29]KAINO T,TAKAGI H.Proline as a stress protectant in the yeast Saccharomyces cerevisiae:effects of trehalose and PRO1 gene expression on stress tolerance[J].Biosci Biotechnol Biochem,2009,73(9):2131-2135.

[30]CHENG Y F,DU Z L,ZHU H,et al.Protective effects of arginine on Saccharomyces cerevisiae against ethanol stress[J].Sci Rep,2016,6:31311.

[31]HIRASAWA T,YOSHIKAWA K,NAKAKURA Y et al.Identification of target genes conferring ethanol stress tolerance to Saccharomyces cerevisiae based on DNA microarray data analysis[J].Biotechnol,2007,131:34-44.

[32]MAHMUD S A,HIRASAWA T,FURUSAWA C,et al.Understanding the mechanism of heat stress tolerance caused by high trehalose accumulation in Saccharomyces cerevisiae using DNA microarray[J].J Biosci Bioeng,2012,113(4):526-528.

[33]ZHANG K,FANG Y H,GAO K H,et al.Effects of genome duplication on phenotypes and industrial applications of Saccharomyces cerevisiae strains[J].Appl Microbiol Biotechnol,2017,101:5405-5414.

[34]YI C F,WANG F L,DONG S J,et al.Changes of trehalose content and expression of relative genes during the bioethanol fermentation by Saccharomyces cerevisiae[J].Can J Microbiol,2016,62:827-835.

[35]ELBEIN A D,PAN Y T,PASTUSZAK I,et al.New insights on trealose:a multifunctional molecule[J].Glycobiology,2003,13(4):17-27.

[36]VAN DIJCK P,COLAVIZZA D,SMET P,et al.Differential importanceof trehalose in stress resistance in fermenting and nonfermenting Saccharomyces cerevisiae cells[J].Appl Environ Microbiol,1995,61(1):109-115.

[37]王宪斌,冯霞,张蓓蓓,等.一株生香酵母冻干菌剂的制备研究[J].食品与发酵科技,2019,56(6):9-12.

[38]MOON M H,RYU J,CHOENG Y H,et al.Enhancement of stress tolerance and ethanol production in Saccharomyces cerevisiae by heterologous expression of a trehalose biosynthetic gene from Streptomyces albus[J].Biotechnol Bioproc Eng,2012,17(9):986-996.

[39]陈小玲,陈英,陆雁,等.酿酒酵母Mbp1 基因缺失突变株耐受性研究[J].基因组学与应用生物学,2016,35(2):378-384.

[40]AJITH B,SARAH F,PAUL J,et al.Trehalose promotes the survival of Saccharomycescerevisiae during lethal ethanol stress,but does not influence growth under sublethal ethanol stress[J].FEMS Yeast Res,2009,9:1208-1216.

[41]WANG P M,ZHENG D Q,CHI X Q,et al.Relationship of trehalose accumulation with ethanol fermentation in industrial Saccharomyces cerevisiae yeast strains[J].Bioresource Technol,2014,152(1):371-376.

[42]VIANNA C R,SILVA C L C,NEVES M J,et al. Saccharomyces cerevisiaestrains from traditional fermentations of Brazilian cacha:trehalose metabolism,heat and ethanol resistance[J].Anton Leeuw,2008,93(1-2):205-217.

[43]DIVATE N R,CHEN G H,WANG P M,et al.Engineering Saccharomyces cerevisiae for improvement in ethanol tolerance by accumulation of trehalose[J].Bioeng Bug,2016,7(6):445-458.

[44]ABE H,FUJITA Y,TAKAOKA Y,et al.Ethanol-tolerant Saccharomyces cerevisiae strains isolated under selective conditions by over-expression of a proofreading-deficient DNA polymerase δ[J].J Biosci Bioeng,2009,108(3):199-204.

[45]TAO X L,ZHENG D Q,LIU T Z,et al.A novel strategy to construct yeast Saccharomyces cerevisiae strains for very high gravity fermentation[J].PLoS ONE,2012,7(2):e31235.

[46]杨昳津,林祥娜,夏永军,等.不同营养添加物对黄酒酵母的乙醇耐受及发酵性能的影响[J].食品与发酵工业,2018,44(1):37-43.

[47]刘琦,祝霞,赵丹丹,等.葡萄酒泥酵母海藻糖提取工艺优化及对3 株非酿酒酵母乙醇耐受性的影响[J].甘肃农业大学学报,2018(4):152-158.

Correlation between trehalose and ethanol tolerance in Saccharomyces cerevisiae

HE Yingfen1,HE Rongrong1,LIU Dunhua1,SUN Yue2*
(1.School of Agriculture,Ningxia University,Yinchuan 750021,China;2.School of Wine,Ningxia University,Yinchuan 750021,China)

Abstract:Saccharomyces cerevisiae has a wide range of applications.In the fermentation process,high-concentration alcohols could increase the permeability of S.cerevisiae cell membranes by destroying their cell structure,the intracellular components leak out,which leads to a decrease in the activity of S.cerevisiae.As a protective agent in S.cerevisiae cells,trehalose can maintain cell membrane integrity,protect bacterial protein and nucleic acid substances,and enhance ethanol tolerance of S.cerevisiae.In the article,the relationship between endogenous trehalose and exogenous trehalose and ethanol tolerance of S.cerevisiae was mainly discussed,aiming to provide a reference for improving the ethanol tolerance of S.cerevisiae.

Key words:Saccharomyces cerevisiae;ethanol tolerance;trehalose

中图分类号:TS201.3

文章编号:0254-5071(2020)11-0001-04

doi:10.11882/j.issn.0254-5071.2020.11.001

引文格式:何迎粉,何荣荣,刘敦华,等.海藻糖与酿酒酵母乙醇耐受性相关性的研究进展[J].中国酿造,2020,39(11):1-4.

收稿日期:2020-02-26

修回日期:2020-04-12

基金项目:宁夏自然科学基金项目(2018AAC03046)

作者简介:何迎粉(1996-),女,硕士研究生,研究方向为葡萄酒微生物。

*通讯作者:孙 悦(1986-),女,副教授,博士,研究方向为酿酒微生物。