米曲霉HDF-7产蛋白酶水解大豆蛋白及其制酱的初步研究

丁 昊1,2,于艳颖1,2,凌宏志1,2,宋 刚1,2,平文祥1,2,葛菁萍1,2*

(1.黑龙江大学 生命科学学院 黑龙江省普通高校微生物重点实验室,黑龙江 哈尔滨 150080;2.黑龙江大学 农业微生物技术教育部工程研究中心,黑龙江 哈尔滨 150080)

摘 要:为深入探讨米曲霉(Aspergillus oryzae)产蛋白酶在制酱方面的作用,该研究采用盐析、凝胶过滤法对米曲霉HDF-7产蛋白酶进行分离纯化。利用纯化的米曲霉HDF-7产蛋白酶对大豆蛋白进行水解,分析蛋白质的降解情况及水解产物中氨基酸的含量,同时应用该蛋白酶制作豆酱,并对豆酱的感官、理化及微生物指标进行分析。结果表明,分离纯化获得米曲霉HDF-7蛋白酶,该蛋白酶对大豆蛋白进行水解后,大豆凝集素、解脂酶及一些球蛋白被水解,且氨基酸含量较酶解前提高18.2%,其中半胱氨酸、丙氨酸、缬氨酸、精氨酸含量极显著提高(P<0.01);由纯化的蛋白酶直接加入原料中来代替制曲,所产出的豆酱除粘着性不高,呈现稀态外,其风味和外观与传统豆酱无明显差异,且大大缩短了制酱时间(7 d),理化指标及微生物指标均符合相关国标要求。

关键词:米曲霉;蛋白酶;大豆蛋白;豆酱;酶法

豆酱是一类传统发酵食品[1],以大豆为主要原料,经煮制、压块、制曲发酵制成。其中含有多种人体所需营养成分[2],经微生物发酵后使其容易被人体消化,并可改善人体肠道功能[3]。许多微生物在豆酱发酵过程中起着重要作用,包括芽孢杆菌、乳杆菌、霉菌、酵母菌等[4-5],其中米曲霉(Aspergillus oryzae)是发酵过程中的主要微生物[6]

王哲等[7]研究发现,传统豆酱制作工艺制曲时间长且受季节限制,通常需要2~4个月,后续为达到最佳风味还需充分发酵3个月。虽然有文献报道[8-9],利用传统方法制酱,控制发酵条件,使得酱发酵至成品的时间大大缩短,由180d缩短至50 d,但还是较酶法制酱时间长。何立涛等[10]研究发现,利用酶法制酱去除制曲步骤,可以使豆酱出品率提高20%。目前,用于制酱的商品酶制剂大多来源于青霉(Penicillium)、黑曲霉(Aspergillusniger)、枯草杆菌(Bacillussubtilis)。CASTRO R J S D等[11]通过使用分离的米曲霉LBA01产生的蛋白酶对大豆分离蛋白进行催化,结果显示,该蛋白酶具有很好的催化活性;曾小波[12]通过研究两株米曲霉蛋白酶在酸性条件下对大豆蛋白的水解能力,结果显示,两株米曲霉所产的蛋白酶均具有较强的水解能力,且均随着pH值的升高,水解程度提高。目前,关于应用米曲霉蛋白酶制酱的研究还未见报道。

本研究以传统豆酱中筛选得到的米曲霉HDF-7为出发菌株,通过盐析、凝胶过滤对其所产的蛋白酶进行分离纯化,利用纯化后的蛋白酶对大豆蛋白进行水解,分析蛋白质的降解情况及氨基酸含量的变化,并将其应用于豆酱的制作,为其在工业制酱的研究发展提供依据,同时促进酶制剂市场的发展。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

1.1.1 样品与试剂

米曲霉HDF-7:黑龙江大学微生物重点实验室,分离自豆酱;大豆蛋白粉:淘宝商城;氢氧化钠(分析纯):天津市光复科技发展有限公司;盐酸(分析纯):沈阳市派尔精细化工制品厂;氨水(分析纯):北京化工厂。其他试剂均为国产分析纯。

1.1.2 培养基

查氏琼脂培养基:蔗糖30 g/L,硫酸镁0.5 g/L,硝酸钠2 g/L,硫酸亚铁0.01 g/L,磷酸氢二钾1 g/L,琼脂20 g/L,氯化钾0.5 g/L。

发酵培养基:酵母提取物3 g/L,葡萄糖10 g/L,麦芽浸膏3 g/L,大豆蛋白胨5 g/L。

以上培养基pH值均自然,用蒸馏水配制,121℃高温湿热灭菌20 min。

1.2 仪器与设备

Air TECH超净工作台:苏净集团安泰有限公司;HQL300A柜式恒温冷冻摇床:中国科学院武汉科学仪器厂;TGL-16B台式离心机:上海安亭科学仪器厂;BG-verMINI迷你垂直电泳仪:北京百晶生物技术有限公司;L-8800氨基酸自动分析仪:日本HiTACHI公司;凝胶层析介质Sephedex G-50:瑞典Amersham公司;732湿强酸性阳离子交换树脂:美国Sigma公司。

1.3 方法

1.3.1 粗酶液的制备

将米曲霉HDF-7斜面于28℃培养箱中培养5 d,加入10 mL无菌生理盐水,洗脱孢子。孢子悬液经无菌擦镜纸过滤于无菌三角瓶(含玻璃珠)中,28℃、300 r/min条件下振荡0.5 h,孢子浓度调至107个/mL。

按1%的接种量将孢子悬液接种于发酵培养基中,28℃、180 r/min条件下培养2 d,离心,上清液即为粗酶液,采用福林-酚试剂测定其蛋白酶活力[13],重复测定3次。

1.3.2 蛋白酶的分离纯化

采用不同饱和度的硫酸铵(0、10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%)对粗酶液进行盐析,确定最适硫酸铵饱和度;采用葡聚糖凝胶G-50层析法对硫酸铵盐析沉淀进行分离、纯化;采用十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)对纯化的米曲霉HDF-7蛋白酶进行检测;回收纯化后的单一蛋白条带,送至上海基康公司进行N端氨基酸测序,测序结果在美国国立生物技术信息中心(national center for biotechnology information,NCBI)进行比对,具体步骤参照文献[14]。

1.3.3 蛋白酶水解大豆蛋白的研究

将2 g大豆蛋白粉加入10 mL去离子水中,50℃条件下水浴溶解10 min,然后加入5 mL蛋白酶酶液(40 U/mL),迅速混匀,反应2 h。待反应结束后,煮沸10 min,使蛋白酶完全变性失活。煮沸后样品静置、冷却,10 000 r/min条件下常温离心20 min,弃沉淀,取上清液待测,以不加酶液的样品作为空白对照。

大豆蛋白质降解分析:利用SDS-PAGE对酶解前后大豆蛋白成分的分子质量大小的分布进行比较。具体步骤参照文献[15]。

氨基酸含量的变化:参照文献[16]对732湿强酸性阳离子交换树脂进行前处理。取5 g处理后的树脂于烧杯中,加入20 mL大豆蛋白水解液,37℃水浴振荡1 h,弃样液。去离子水清洗树脂2~3次,树脂中加入15 mL氨水(5 mol/L),37℃水浴振荡10 min,取清液。氨水洗脱一次,融合两次洗液并采用沸水浴蒸干。用0.02 mol/L HCl定容至50 mL,混匀,获得样品。以原盐酸溶液为空白对照组,利用氨基酸自动分析仪进行检测。

1.3.4 酶法制酱初步研究

原料预处理:100 g大豆蛋白粉中加入15%的盐水100 mL,充分搅匀后于121℃条件下高压灭菌15 min。

豆酱的发酵:原料冷却至40~45℃后,按照15 U/g原料加入纯化的蛋白酶,充分搅拌均匀,保温发酵。发酵3 d后升温至50℃,继续保温发酵4 d,期间每天搅拌一次。

1.3.5 豆酱的感官评价

以曲法制得的豆酱(宝泉牌)作对照,邀请数位试吃人员对豆酱的色、香、味及发酵形态进行整体性评价[17]

1.3.6 豆酱理化指标的测定

总酸的测定:参照GB/T 5009.39—2003《酱油卫生标准的分析方法》;食盐的测定:参照GB5009.42—2016《食品安全国家标准食盐指标的测定》;铅的检测:参照GB5009.12—2010《食品安全国家标准食品中铅的测定》;总砷的测定:参照GB 5009.11—2014《食品安全国家标准食品中总砷及无机砷的测定》;总氨基酸态氮的测定:参照GB/T5009.40—2003《酱卫生标准的分析方法》;总黄曲霉毒素B1的测定:参照GB 5009.22—2016《食品安全国家标准食品中黄曲霉毒素B族和G族的测定》。

1.3.7 豆酱微生物指标的测定

大肠菌群的测定:参照GB 4789.3—2016《食品安全国家标准食品微生物学检验大肠菌群计数》;致病菌的测定:参照GB 4789.4—2016《食品安全国家标准食品微生物学检验沙门氏菌检验》、GB4789.10—2010《食品安全国家标准食品微生物学检验金黄色葡萄球菌检验》、GB 4789.5—2012《食品安全国家标准食品微生物学检验志贺氏菌检验》。

2 结果与分析

2.1 蛋白酶纯化结果

2.1.1 (NH42SO4盐析饱和度的确定

(NH42SO4沉淀蛋白酶的盐析曲线见图1。

图1 蛋白酶硫酸铵盐析曲线
Fig.1 Salting-out curve of ammonium sulfate of protease

由图1可知,随着硫酸铵溶液饱和度逐渐上升,上清液中剩余酶活也逐渐降低,当饱和度达到70%时,剩余酶活最低,为(3.34±0.24)U/mL,相对酶活为(13.53±0.96)%;当饱和度达到80%时,剩余酶活为(3.39±0.25)U/mL,相对酶活为(13.73±1.01)%,变化不明显,因此,硫酸铵沉淀蛋白酶的最佳饱和度是70%。

2.1.2 Sephadex G-50层析

利用Sephadex G-50对盐析沉淀进行层析,结果见图2。

图2 蛋白酶Sephadex G-50层析柱洗脱曲线
Fig.2 Elution profile of protease on Sephadex G-50 column

由图2可知,盐析沉淀经Sephadex G-50层析后得到洗脱峰1和2,根据层析原理可知,洗脱峰1的分子质量大于洗脱峰2,对两峰的收集液的蛋白酶活进行测定发现,酶活主要集中在洗脱峰1中,留存洗脱峰1的收集液以备后续检测。

2.1.3 SDS-PAGE结果

将纯化后的蛋白酶进行SDS-PAGE,经染色脱色后得到图3。

图3 纯化后蛋白酶的SDS-PAGE结果
Fig.3 SDS-PAGE result of protease after purification

由图3可知,洗脱峰1经SDS-PAGE检测后,为单一条带,说明此蛋白酶已达到电泳纯。根据蛋白质Marker可推测,此蛋白酶分子质量为30 kDa左右。

2.1.4 氨基酸序列分析

切下目标条带(30kDa)送至上海基康公司进行N端氨基酸测序,得到含12个氨基酸的序列:GGGNDYVILNAQ。将此氨基酸序列在NCBI上比对后发现,其与米曲霉(Aspergillus oryzae)RIB40的中性蛋白酶(ACCESSION:AAT68480)的N端序列具有很高的相似度。

2.2 蛋白酶水解大豆蛋白的研究

2.2.1 大豆蛋白质降解产物的分析

大豆蛋白主要是球蛋白,根据不同分子质量可分为2S、7S、11S和15S四组[18],其中以7S和11S为主。主要成分有胰蛋白酶抑制剂、细胞色素C、大豆凝集素、解脂酶、β-淀粉酶、7S球蛋白、11S球蛋白[19]。大豆蛋白经水解后,产物以糖基化氨基酸和氨基酸为主。刘汝萃等[20]利用碱性蛋白酶水解大豆分离蛋白发现,酶解主要发生在7S和11S的酸性亚基上,但随着酶解时间的延长,7S亚基条带变化并不显著。

利用纯化的米曲霉蛋白酶HDF-7对大豆蛋白进行水解,采用SDS-PAGE对水解产物进行分析,结果见图4。

图4 酶解前后大豆蛋白的SDS-PAGE结果
Fig.4 SDS-PAGE results of soybean protein before and after enzymatic hydrolysis

由图4可知,根据蛋白分子质量推测大豆蛋白经米曲霉HDF-7蛋白酶酶解后,其中大豆凝集素、解脂酶及一些球蛋白被水解,而胰蛋白酶抑制剂和β-淀粉酶无明显变化,且一些小分子蛋白也未被水解。

大豆凝集素是一种糖蛋白,是一种抗营养因子,具有凝集和促分裂的生物学活性,可由小肠上皮进入循环系统进而诱发免疫反应,破坏机体正常代谢,导致小肠粘膜损伤,内源氮的大量损失,体蛋白加强分解等一系列反应[21]。本实验提取的米曲霉HDF-7蛋白酶能有效水解大豆凝集素,阻止其抗营养作用,使大豆蛋白营养成分更易被吸收,并大大减少对机体的不良影响。

2.2.2 氨基酸含量的变化

由于氨基酸是一种多官能团分子,食用后可与风味受体结合产生特定风味。因此,豆酱中的游离氨基酸的种类和数量对其品质显得尤为重要[22-23]。利用732湿强酸性阳离子交换树脂提取大豆蛋白的水解产物,用氨基酸自动分析仪测定水解产物中各种氨基酸的含量,大豆蛋白酶解前后氨基酸种类的谱图分别见图5和图6。酶解前后各种氨基酸含量的变化结果见表1。

图5 大豆蛋白酶解前氨基酸分析色谱图
Fig.5 Chromatogram of amino acid analysis before enzymatic hydrolysis of soybean protein

图6 大豆蛋白酶解后氨基酸分析色谱图
Fig.6 Chromatogram of amino acid analysis after enzymatic
hydrolysis of soybean protein

由表1可知,大豆蛋白经米曲霉HDF-7蛋白酶酶解后,总氨基酸含量较酶解前增加18.2%,其中半胱氨酸、丙氨酸、缬氨酸、精氨酸含量明显提高(P<0.01)。立体构型不同的氨基酸含有不同的味道[24],丙氨酸含有很强的甜味,而精氨酸有苦味,缬氨酸有微甜但略苦的味道,因此,米曲霉HDF-7蛋白酶是一种有潜在应用价值的生物催化剂。

表1 大豆蛋白酶解前后氨基酸含量的变化
Table1 Changes of amino acid contents of before and after enzymatic hydrolysis of soybean protein

氨基酸种类 大豆蛋白酶解前/% 大豆蛋白酶解后/%天冬氨酸(Asp)苏氨酸(Thr)丝氨酸(Ser)谷氨酸(Glu)甘氨酸(Gly)半胱氨酸(Cys)丙氨酸(Ala)缬氨酸(Val)异亮氨酸(Ile)亮氨酸(Leu)酪氨酸(Tyr)苯丙氨酸(Phe)赖氨酸(Lys)精氨酸(Arg)总氨基酸7.81±0.05 2.42±0.05 3.04±0.04 4.96±0.04 6.44±0.04 4.86±0.04 4.92±0.04 2.28±0.02 1.50±0.03 6.13±0.03 12.03±0.03 7.85±0.03 10.47±0.03 3.87±0.03 78.58±0.49 9.76±0.07 2.76±0.12 3.75±0.10 5.42±0.07 7.64±0.09 9.72±0.08 7.45±0.10 6.56±0.08 1.55±0.08 6.23±0.05 11.54±0.06 10.21±0.03 4.93±0.04 9.26±0.10 96.79±1.04

2.3 豆酱的感官评价

传统豆酱色泽大体呈深红或深棕褐色、酱体光亮细腻,酱香浓香绵柔,无不良刺激气味,鲜味突出、咸甜适宜,粘稠适度、均匀、无杂质。但是传统豆酱制作耗时费工(20 d),因此,尝试直接将纯化的蛋白酶加入大豆豆粉中制酱,对其进行感官评价,结果见表2。

表2 豆酱的感官品评结果
Table 2 Results of sensory evaluation of soybean sauce

项目 曲法制酱 酶法制酱色泽滋味香气体态红褐色,有光泽鲜味突出,细滑绵柔、甜咸适中无异味酱香、酯香、醇香浓郁柔和粘稠适度,均匀无杂质酱褐色,有光泽有鲜味,咸甜适宜,柔滑细腻有酱香和酯香,无不良气味偏稀,无杂质

由表2可知,与传统的曲法制得的豆酱相比,酶法制得的豆酱呈酱褐色,口感适宜,咸而不腻,具有酱、酯香,且酱整体偏稀,鲜味也比较适中。总体来说,其风味、外观与传统豆酱差别不大,但传统曲法制酱耗时长,酶法制酱时间短(7 d),工艺较简单。

2.4 豆酱理化指标的测定

豆酱中总酸含量为1.78g/100g,符合国标中总酸含量≤2.0 g/100 g的要求;食盐含量为45 g/100 g,符合国标中食盐含量≥12.0 g/100 g的要求;铅含量为0.02 mg/kg,符合国标中铅含量≤0.5 mg/kg的要求;总砷含量为0.1 mg/kg,符合国标中总砷含量≤0.5 mg/kg的要求;总氨基酸态氮含量为0.97g/100g,符合国标中氨基酸态氮含量≥0.3 g/100 g的要求;黄曲霉毒素B1含量<5 μg/kg,符合国标中黄曲霉毒素B1含量≤5 μg/kg的要求。

2.5 豆酱微生物指标的测定

豆酱中大肠菌群呈阴性,符合国标中大肠菌群量≤30 MPN/100 g的要求;未检出沙门氏菌、金黄色葡萄球菌、志贺氏菌等致病菌,符合豆酱中致病菌不得检出的要求。

3 结论

采用盐析法、凝胶过滤法分离纯化得到米曲霉HDF-7蛋白酶,该蛋白酶对大豆蛋白水解后,大豆凝集素、解脂酶及一些球蛋白被水解,且总氨基酸含量较水解前增加18.2%,其中丙氨酸、缬氨酸、半胱氨酸和精氨酸的含量明显提高。采用该蛋白酶制作的豆酱除粘着性不高,呈现稀态外,其风味、外观与传统豆酱差别不大,理化指标和微生物指标均符合相关国标要求,且大大缩短了制酱时间(7d),为其在工业制酱的研究发展中提供依据,同时对酶制剂市场的发展具有促进作用。

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Hydrolysis of soybean protein by protease fromAspergillus oryzaeHDF-7 and preparation of soybean paste

DING Hao1,2,YU Yanying1,2,LING Hongzhi1,2,SONG Gang1,2,PING Wenxiang1,2,GE Jingping1,2*
(1.Key Laboratory of Microbiology,College of Life Sciences,College of Heilongjiang Province,Heilongjiang University,Harbin 150080,China;2.Ministry of Education and Engineering Research Center of Agricultural Microbiology Technology,Heilongjiang University,Harbin 150080,China)

Abstract:In order to further explore the role of protease fromAspergillus oryzaein the preparation of soybean paste,the protease fromA.oryzae HDF-7 was purified by salting out and gel filtration.The soybean protein was hydrolyzed by the purified protease fromA.oryzaeHDF-7 to analyze the degradation of the protein and the amino acid content in the hydrolyzed products,and the protease was applied to make soybean paste,and the sensory,physicochemical and microbiological indexes of the sauce were analyzed.The results showed that the protease fromA.oryzaeHDF-7 was isolated and purified.After soybean protein was hydrolyzed with the protease,the soybean lectin,lipolytic enzyme and some globulin were hydrolyzed,and the amino acid content was 18.2%higher than that before enzymatic hydrolysis.The contents of cysteine,alanine,valine and arginine were significantly increased(P<0.01).The purified protease was directly added to the raw material instead of the koji,in addition to the low-adhesiveness and thin state,the flavor and appearance of soybean paste were not significantly different from the traditional soybean paste,and the preparation time was greatly shortened(7 d).The physical and chemical indicators and microbial indicators were in line with relevant national standards.

Key words:Aspergillus oryzae;protease;soybean protein;soybean sauce;enzymatic method

中图分类号:TS2;C39

文章编号:0254-5071(2019)04-0027-05

doi:10.11882/j.issn.0254-5071.2019.04.006

引文格式:丁昊,于艳颖,凌宏志,等.米曲霉HDF-7蛋白酶水解大豆蛋白及其制酱的初步研究[J].中国酿造,2019,38(4):27-31.

收稿日期:2018-09-27 修回日期:2019-02-24

基金项目:国家自然科学基金项目(31570492)

作者简介:丁 昊(1995-),男,硕士研究生,研究方向为微生物学。

*通讯作者:葛菁萍(1972-),女,教授,博士,研究方向为微生物学。