黄精（Polygonatum cyrtonema）为百合科植物，分布于南方热带外的地区，资源丰富，临床上广泛用于气阴两虚的补益中药[1-2]。我国关于黄精记载的古籍较多，最早出现与《名医别录》，其后历代医药典籍均有记载。黄精性甘、平，归脾、肺、肾经，于2002年被列入药食同源目录，是补气养阴，健脾，润肺的良药。现代研究表明黄精富含多糖[3-4]、皂苷[5-6]、黄酮[7-8]、氨基酸[9]、生物碱[10]、挥发性成分[11]等多种活性成分，在抗氧化[12]、抗糖尿病[13]、免疫调节[14]、抗骨质疏松[15]、降血糖[16]、降血脂[17]、抗肿瘤[18]、抗菌[19]方面具有显著功效。
生黄精因具有麻舌感，对咽喉具有刺激性，不可直接使用，需要通过炮制减轻其刺激性，同时达到增强药效的目的[20]。黄精炮制方法众多，有单蒸、酒制、九蒸九制、重蒸、发酵等，主要以“九蒸九制”为代表，这些炮制方法对黄精有效成分均有一定影响，但对炮制过程中功效成分变化的研究较少。随着对黄精炮制工艺的深入研究，发现炮制工艺对黄精中的化学成分、药理作用产生深远影响[21]。管彦辉等[22]系统阐述了滇黄精炮制前后化学成分的变化，为研究滇黄精生熟饮片中差异性物质的分析提供新思路。王俊楠等[23]探究了蒸制处理对鸡头黄精有效成分及代谢物种类和含量影响，结果显示随着炮制次数的增加，其还原糖、总酚、黄酮含量逐渐升高，抗氧化性逐渐增强，而多糖含量逐渐降低。一制与九制相比，代谢物在正负离子模式下分别176种、148种差异性。因此深入探究炮制工艺与九华山黄精药材品质之间的关系，不仅有助于更好地理解黄精的药用本质，而且对于黄精保障临床用药的安全性和有效性具有至关重要的意义。
本研究以九华山多花黄精为原料，采用分光光度法、电子舌及气质联用技术等方法系统地对比分析炮制过程中感官评价、浸出物、活性成分、挥发性成分、滋味及抗氧化活性的变化，旨在揭示九蒸九制对黄精药材品质的影响。期望为九华山黄精的合理利用、炮制工艺的优化以及相关产业的发展提供科学依据和理论支持，进一步推动九华山黄精在中医药领域发挥更大的价值，为人类健康事业贡献力量。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
1.1.1 材料黄精：由九华山黄精种植基地提供，经劲牌有限公司陈建军博士鉴定为多花黄精（Polygonatum cyrtonema）。
1.1.2 化学试剂
没食子酸、5-羟甲基糠醛、人参皂苷Re、无水葡萄糖、芦丁标准品（纯度均＞98%）：中国食品药品检定研究院；其他试剂均为国产分析纯试剂。
1.2 仪器与设备
TU-1901紫外分光光度计、P076高速台式冷冻离心机：上海析谱仪器有限公司；101-0AB型电热鼓风干燥箱：北京中兴伟业仪器有限公司；UltiMate 3000高效液相色谱仪：美国赛默飞科技（中国）有限公司；SQP电子分析天平：德国赛多利斯公司；SK1200H 数控超声波清洗仪：上海科导超声仪器有限公司；TS-5000Z味觉分析系统（电子舌）：日本INSENT公司；SYNERGY H1多功能酶标仪：美国伯腾仪器有限公司。
1.3 方法
1.3.1 黄精样品的制备及感官评价
取鲜品黄精适量，除去根须等杂质，洗净，切厚片，烘干（50 ℃），即得生黄精，记为Y0，记录并描述其感官特征。
取完整、无病变的鲜品黄精，去除根须等杂质后洗净，切厚片，加黄酒和水拌匀（黄精、黄酒及水的比例为100∶5∶15），待黄酒和水被吸收后，利用蒸汽蒸制2 h，取出，于50 ℃鼓风干燥至水分含量低于15%，即得一蒸一制（炮制）黄精，如此重复操作9次，即得九蒸九制黄精，分别记为Y1～Y9，记录并描述其感官特征。
1.3.2 分析检测
（1）浸出物
浸出物的测定参照《中国药典》[1]进行检测。
（2）活性成分
多糖含量的测定：根据《中国药典》[1]中黄精多糖的检测方法。以葡萄糖标准溶液质量浓度（X）作为横坐标，波长582 nm处测定的吸光度值（Y）为纵坐标，绘制标准曲线，得到标准曲线回归方程为Y=0.040 14X+0.019 8，相关系数R2=0.999 4，在0～25.870 1 mg/L的质量浓度范围内线性关系良好。根据葡萄糖标准曲线回归方程计算黄精中多糖含量。
还原糖含量的测定：参照周改莲[24]的方法。以葡萄糖标准溶液质量浓度（X）为横坐标，波长540 nm处测定的吸光度值（Y）为纵坐标，绘制葡萄糖标准曲线，得到标准曲线回归方程为Y=0.007 57X-0.000 8，相关系数R2=0.999 9，在0～109.790 1 mg/L的质量浓度范围内线性关系良好。根据葡萄糖标准曲线回归方程计算黄精中还原糖含量。
总酚含量的测定：参照XIA J B等[25]的方法。以没食子酸质量浓度（X）为横坐标，波长760 nm处吸光度值（Y）为纵坐标，绘制没食子酸标准曲线，得到标准曲线回归方程Y=0.010 68X+0.005 82，相关系数R2=0.999 8，在0～52.868 7 mg/L的质量浓度范围内线性关系良好。根据没食子酸标准曲线回归方程计算黄精中总酚含量。
总皂苷含量的测定：参照王天梅等[26]的方法。以人参皂苷Re质量浓度（X）为横坐标，波长550 nm 处的吸光度值（Y）为纵坐标，绘制标准曲线，得到标准曲线回归方程Y=0.025 91X-0.001 93，相关系数R2=0.999 8，在0～33.1075 mg/L的质量浓度范围内线性关系良好。根据人参皂苷Re标准曲线回归方程计算黄精中总皂苷含量。
总黄酮含量测定：参考钱森和等[27]的方法。以芦丁标准溶液质量浓度（X）作为横坐标，波长500 nm处的吸光度值（Y）作为纵坐标，绘制标准曲线，得到标准曲线回归方程Y=0.013 11X-0.005 39，相关系数R2=0.999 9，在0～55.386 4 mg/L的质量浓度范围内线性关系良好。根据芦丁标准曲线回归方程计算黄精中总黄酮含量。
（3）挥发性成分的测定
挥发性成分的测定参考孙细珍等[28]的方法并稍加改动。
样品前处理：取3.0 g黄精于20 mL顶空瓶中，加入20μL内标混合物（2-辛醇，200 mg/L），盖上瓶盖，摇匀。将固相微萃取头插入气相色谱进样口老化30 min，老化温度250 ℃，载气流量3 mL/min。将顶空瓶放于自动微萃取装置中萃取，萃取头插入顶空瓶深度为22 mm，样品平衡时间1 min，萃取温度50 ℃，萃取时间45 min，进样口脱附5 min。
气相色谱条件：DB-FFAP毛细管色谱柱（60 m×0.25mm×0.25 μm），升温程序为初温50 ℃，以3.5 ℃/min升至220 ℃，保持10min，再以15℃/min升至250℃；载气为高纯氦气（He），流速为1 mL/min，进样口温度为250 ℃，进样量为1 μL，不分流进样。
质谱条件：电子电离（electronic ionization，EI）源，电子能量70 eV；离子源温度230 ℃；四级杆温度150 ℃；辅助通道加热温度280 ℃；扫描质量范围20～500 amu。
定性定量方法：利用美国国家标准技术研究所（National Institute of Standards and Technology，NIST）谱库对黄精药材中的化合物进行定性，根据内标法对解析出来的化合物进行半定量分析。
（4）滋味的测定
采用电子舌滋味分析系统对不同炮制次数的黄精样品滋味进行测定[29]。将各传感器安装完后在清洗液中清洗90 s，随后用参比液清洗2次，待传感器达到平衡后，开始检测样品，每个样品检测时间为30 s，随后传感器在基准液中清洗3 s，最后测试回味的时间为30 s。
（5）抗氧化活性的测定
氧自由基吸收能力（oxygen radical absorbance capacity，ORAC）按照杨灵光等[30]的方法进行测定；1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picryl-hydrazyl，DPPH）自由基清除能力参照YANG J J等[31]的方法进行测定；2,2'-联氨-双-3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸（2,2'-azino-bis（3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid），ABTS）自由基清除能力参照杨壮等[32]的方法进行测定。
1.3.3 数据处理与统计分析
试验数据均重复检测3次，结果采用“平均值±标准偏差”表示。采用Excel 2010进行数据处理，Origin 23.0进行绘图，使用SIMCA14.1进行主成分分析（principal component analysis，PCA）和偏最小二乘-判别分析（partial least squaresdiscrimination analysis，PLS-DA），利用SPSS Statistics 27.0对结果进行方差分析，P＜0.05表示差异有统计学意义。
2 结果与分析
2.1 感官评价
九蒸九制的黄精切片如图1所示。由图1可知，随着炮制次数的增加，色泽逐渐变深，由一蒸一制的棕黄色，到五蒸五制乌黑色，再到九蒸九制的黑褐色。气味也发生了变化，生黄精无明显的气味，炮制之后的黄精具有一定的焦香味。在风味方面也呈现出不一样的口感，鲜黄精具有较重的麻舌感，几乎无甜味，五蒸五制后麻舌感消失，且产生甜味，但六蒸六制后苦味和酸涩味增强。结果表明，合理的炮制次数可以改善黄精的风味和药效，但过度的炮制可能会导致不良风味的增加，从感官评价结果来看，黄精六蒸六制较佳。
图1 不同炮制次数多花黄精样品的感官评价
Fig.1 Sensory evaluation of Polygonatum cyrtonema with different steaming and drying times
2.2 浸出物及活性成分含量比较分析
浸出物是衡量药材质量标准的重要指标，也是炮制工艺参考依据。不同蒸制次数多花黄精中浸出物及活性成分含量的测定结果见表1。由表1可知，不同炮制次数下黄精中的浸出物并没有明显的差异，与鲜黄精相比略有降低，说明该炮制工艺对浸出物的影响不大。蒸制可以促进黄精中皂苷含量的增加，随着蒸制次数的增加呈现出先上升后稳定的趋势。从一蒸一制到四蒸四制，总皂苷含量迅速增加，由生黄精的0.58%，跨越式的增长到四蒸四制的5.9%，增长了近10倍，随后趋于稳定。未蒸制时黄精中的多糖含量最高，达到14.48%，随着蒸制次数的增加，多糖含量逐渐降低，在一蒸一制后下降至8.63%，降幅达到40.4%，三蒸三制后趋于稳定，含量保持在4.5%左右，这与吴丰鹏等[33]研究结果一致。而还原糖的含量变化趋势与多糖相反，未蒸制的黄精中还原糖含量较低为6.40%，一蒸一制后达到了20.47%，涨幅为217.5%，三蒸三制后虽略有增长，但涨幅较小，趋于稳定。总多酚的含量随着蒸制次数的增加，呈波动式上升，在八蒸八制时达到最高为1.79%，第七次和第九次蒸制时虽略有降低，但整体上仍呈现上升趋势。这可能是由于黄精在高温作用下，细胞或者细胞壁的组分发生降解，使得游离态多酚物质加速释放[34]。总黄酮含量的变化趋势与总酚相一致，由未蒸制的0.14%增长至八蒸八制的0.99%，增加了近7倍，可能由于黄精在高温环境中，细胞壁被破坏，使得内部的黄酮类物质溶出，郭旭琴[35]研究发现，温度是影响黄酮类物质合成的首要因素。这与杨圣贤等[36]研究结果一致。由此可知，随着炮制次数的增加，黄精样品中的浸出物及活性成分成分呈现不同的变化趋势，从浸出物及活性成分含量结果来看，黄精六蒸六制较佳。
表1 不同炮制次数多花黄精中浸出物及活性成分含量的比较
Table1 Comparison of extracts and active components contents in Polygonatum cyrtonema with different steaming and drying times
样品编号 浸出物/% 多糖/% 还原糖/% 总多酚/% 总黄酮/% 总皂苷/%Y0 Y1 Y2 Y3 Y4 Y5 Y6 Y7 Y8 Y9 79.42±0.10 74.93±0.15 75.53±0.51 76.63±0.15 74.60±0.17 73.53±0.32 72.47±0.12 74.70±0.20 72.33±0.23 72.40±0.20 14.48±0.61 8.63±0.15 6.34±0.15 4.93±0.15 4.54±0.15 4.67±0.21 4.80±0.10 4.30±0.10 4.57±0.12 4.33±0.15 6.40±0.20 20.47±0.85 31.53±0.57 42.42±0.55 50.14±1.02 52.77±0.85 53.67±0.40 55.73±0.60 58.79±0.42 59.77±0.57 0.17±0.02 0.39±0.01 0.47±0.02 0.62±0.01 0.74±0.03 1.39±0.05 1.45±0.06 1.33±0.02 1.79±0.03 1.63±0.01 0.14±0.02 0.16±0.01 0.22±0.03 0.31±0.02 0.43±0.03 0.62±0.02 0.74±0.03 0.84±0.03 0.99±0.02 0.94±0.03 0.58±0.04 1.72±0.05 2.32±0.07 4.75±0.05 5.90±0.05 6.34±0.06 6.67±0.06 6.85±0.03 6.92±0.06 6.60±0.03
对不同蒸制次数的黄精药材中6种活性成分进行相关性分析，结果见表2。
表2 不同炮制次数的多花黄精浸出物及活性成分相关性分析
Table 2 Correlation analysis of extracts and active components in Polygonatum cyrtonema with different steaming and drying times
注：“*”表示在0.05水平上显著相关（P＜0.05）。
指标 多糖 浸出物 总黄酮 总多酚 总皂苷 还原糖多糖浸出物总黄酮总多酚总皂苷还原糖1 0.37-0.72*-0.69*-0.91*-0.94*1-0.80*-0.86*-0.62-0.65 1 0.97*0.88*0.90*1 0.87*0.89*1 0.98* 1
由表2可知，还原糖与总黄酮、总多酚、总皂苷呈显著正相关（P＜0.05）；总皂苷与总黄酮、总多酚呈显著正相关（P＜0.05），浸出物与总黄酮、总多酚呈显著负相关（P＜0.05）；多糖与总黄酮、总皂苷、总多酚、还原糖呈显著负相关（P＜0.05）。结果表明，多糖对黄精药材的品质具有重要影响。
2.3 不同炮制次数多花黄精挥发性风味成分差异分析
2.3.1 主成分分析和偏最小二乘-判别分析
利用气质联用结合NIST谱库对黄精药材中的挥发性化合物进行定性解析，根据内标含量对解析出来的化合物进行半定量分析。利用SIMCA软件对不同炮制次数的黄精样品中挥发性风味物质进行主成分分析（PCA）及偏最小二乘-判别分析（PLS-DA），结果见图2。由图2可知，PCA及PLS-DA能有效区分不同炮制次数的黄精样品，其中未炮制与炮制样品有显著差异性，其中炮制1～3次的样品无显著差异性，炮制6～9次的样品无显著差异性，前3次炮制样品与后6次炮制样品具有显著差异。这可能由于炮制前3次的样品在时间和炮制次数较少，药材的细胞壁未完全被破坏，挥发性成分未完全释放出来，随着炮制次数的增加，挥发性成分完全释放。从挥发性风味成分角度来看，炮制6次后与炮制9次的样品之间没有显著差异。
图2 不同炮制次数的多花黄精中挥发性风味物质主成分分析（a）及偏最小二乘-判别分析（b，c，d）
Fig.2 Principal component analysis (a) and partial least squares-discrimination analysis (b, c, d) of volatile flavor substances in Polygonatum cyrtonema with different steaming and drying times
2.3.2 炮制黄精差异潜在标记化合物筛选
由图3可知，PLS-DA可很好的区分炮制与未炮制黄精样品、未炮制与炮制前3次样品以及炮制前3次和炮制后4次的样品。变量重要性投影（variable importance in the projection，VIP）表示每个变量对样品区分的贡献程度，当VIP＞1时被认为是样品差异的潜在标记化合物[37]。由图3亦可知，导致未炮制与炮制后的黄精药材中挥发性成分差异的潜在标记化合物有39种，未炮制与炮制前3次的黄精药材中挥发性成分差异的潜在标记化合物有50种，炮制前3和炮制后4次的黄精药材中挥发性成分差异的潜在标记化合物有59种。
图3 基于偏最小二乘-判别分析不同炮制次数多花黄精中挥发性风味物质变量重要性投影值
Fig.3 Variable importance in the projection values of volatile flavor substances in Polygonatum cyrtonema with different steaming and drying times based on partial least squares-discrimination analysis
a：炮制与未炮制黄精样品；b：未炮制与炮制前3次样品；c：炮制前3次和炮制后4次样品。
2.4 不同炮制次数黄精滋味分析
不同炮制次数黄精滋味电子舌分析响应值结果见表3。由表3可知，Y0～Y9样品中，苦味和甜味较其他的滋味具有较大的响应值，分别在7.34～13.45、1.89～14.29之间，其中Y0的苦味和甜味的响应值最大，分别为13.45、14.29，说明黄精鲜品中的主要滋味即为苦味和甜味。随着炮制次数的增加，黄精中的甜味、苦味、涩味和鲜味均呈现出淡化的趋势，这可能由于在高温的反复作用下，黄精中的呈甜味的糖类物质被逐渐降解。氨基酸、有机酸等是鲜味的主要呈味物质，而鲜味值逐渐降低，这可能与黄精中的氨基酸、有机酸类物质减少有关。随着炮制次数的增加，黄精中的呈味物质发生改变，从而对黄精的滋味产生影响，从滋味结果来看，黄精六蒸六次较佳。
表3 基于电子舌分析响应值比较不同炮制次数多花黄精滋味
Table 3 Comparison of taste of Polygonatum cyrtonema with different steaming and drying times based on response values of electronic tongue analysis
编号 酸味 苦味 涩味 苦味回味样品涩味回味 鲜味 丰富性 咸味 甜味Y0 Y1 Y2 Y3 Y4 Y5 Y6 Y7 Y8 Y9-26.45-20.12-16.35-12.78-10.66-9.46-7.11-5.23-2.25-3.56 13.45 12.02 12.78 9.52 9.19 8.45 8.12 8.26 7.25 7.34 7.78 6.28 5.88 5.38 5.11 4.67 6.29 5.86 5.24 5.09-0.45-0.49-0.55-0.42-0.86-1.09-1.21-1.29-1.08-1.12 0.22 0.11 0.31 0.41 0.46 0.32 0.42 0.38 0.36 0.44 6.89 6.16 5.52 5.15 4.47 4.69 3.55 3.18 2.56 2.19 0.89 0.88 0.86 0.88 0.84 0.87 0.88 0.89 0.87 0.84-14.75-15.12-16.78-17.89-14.78-15.66-13.56-17.21-12.44-18.32 14.29 12.56 10.02 8.15 6.76 5.78 4.57 2.87 2.65 1.89
2.5 抗氧化活性分析
抗氧化能力指数（ORAC）是通过抑制氢转移过程终止自由基链式反应的抗氧化能力测试方法[38]。不同炮制次数黄精的抗氧化活性测定结果见图4。由图4a可知，随着炮制次数的增加，ORAC值逐渐变大，说明ORAC与炮制次数呈正相关，当炮制次数为8次时，ORAC值达到最高值为18 662.45 mmol Trolox当量（Trolox equivalent，TE）/mL。
图4 不同炮制次数多花黄精的抗氧化活性测定结果
Fig.4 Determination results of antioxidant activity of Polygonatum cyrtonema with different steaming and drying times
DPPH是一种常用的抗氧化能力检测方法，由图4b可知，不同炮制工艺下的黄精样品均具有DPPH自由基清除能力，且随着炮制次数的增加，DPPH自由基清除能力越强，DPPH自由基清除率在21.89%～72.50%，在炮制8次时DPPH自由基清除能力达到最高为72.50%。
ABTS是利用氧化剂将其氧化成绿色的ABTS+。由图4c可知，炮制次数越多，清除ABTS+的能力越强，抗氧化能力在68.89%～93.52%。从一蒸一制到五蒸五制样品中的抗氧化能力快速增长，在炮制5次时清除ABTS+的能力达到最高，为93.52%，五蒸五制之后样品抗氧化能力趋于稳定。随着炮制次数的增加，黄精样品的抗氧化能力逐渐加强，从抗氧化活性结果来看，黄精八蒸八制较佳。
3 结论
本研究以九华山黄精为研究对象，通过对炮制过程黄精的感官、浸出物、活性成分、挥发性物质及抗氧化活性等指标检测，揭示了九蒸九制对黄精药材品质的影响。结果表明，随着炮制次数的增加，黄精外观颜色由棕黄色转变为黑褐色，麻舌感逐渐消失，焦香味逐渐增强，多糖含量先逐渐减少后趋于稳定，还原糖、总皂苷、总多酚、总黄酮等成分含量增加，浸出物含量无明显变化，抗氧化能力逐渐增强，而黄精中的甜味、苦味、涩味和鲜味均呈现出淡化的趋势。这可能由于在高温的反复作用下，黄精中的呈甜味的糖类物质以及氨基酸、有机酸等被逐渐降解。通过PCA及PLS-DA能有效区分不同炮制次数的黄精样品，造成黄精样品显著差异性潜在标记化合物有39种，从挥发性风味成分角度来看，炮制6次与炮制9次的黄精样品无明显差异。综上，黄精炮制6次为宜。
[1]国家药典委员会.中华人民共和国药典（一部）[M].北京：中国医药科技出版社，2020：319-320.
[2]彭腾，巫晓霞，李羿，等.黄精名称及其基原的本草考证[J].中国现代应用药学，2023，40（1）：75-81.
[3]郭安君，李雪影，李晓炜，等.多花黄精多糖提取工艺优化及抗氧化机制研究[J].合肥工业大学学报（自然科学版），2024，47（5）：678-684.
[4]ZHAO X,PATIL S,QIAN AR,et al.Bioactive compounds of Polygonatum sibiricum-therapeutic effect and biological activity[J].Endocr, Metab Immune Disord Drug Targets,2022,22(1):26-37.
[5]刘晨星，曹艳，夏其乐.多花黄精根须皂苷的提取工艺及其抗氧化活性研究[J].浙江农业学报，2024，36（5）：1144-1152.
[6]LU J M,YAO J C,PU J Z,et al.Transcriptome analysis of three medicinal plants of the genus Polygonatum:identification of genes involved in polysaccharide and steroidal saponins biosynthesis[J].Front Plant Sci,2023,14:1293411.
[7]李小红，杨显辉，李安，等.滇黄精总黄酮超声辅助双水相提取工艺优化及其抗氧化活性[J].江苏农业科学，2019，47（11）：234-238.
[8]ZHANG H L, LI X P, KANG M, et al.Sustainable ultrasound-assisted extraction of Polygonatum sibiricum saponins using ionic strength-responsive natural deep eutectic solvents[J].Ultrason Sonochem, 2023, 100:106640.
[9]SUN Z W,SONG C,CUI L L,et al.Determination of amino acid content in Polygonatum sibiricum by microwave hydrolysis fully automatic amino acid analysis method[J].Special Prod Res,2023,45(1):127-130.
[10]宁火华，袁铭铭，邬秋萍，等.多花黄精化学成分分离鉴定[J].中国实验方剂学杂志，2018，24（22）：77-82.
[11]杜李继，陈瑞瑞，王凯，等.气质联用法研究多花黄精药材炮制过程中挥发性物质的变化[J].安徽农业大学学报，2021，48（6）：1035-1040.
[12]蔡春燕，陈鑫，刘绍姜，等.不同炮制阶段多花黄精内在质量及体外抗氧化作用比较研究[J].时珍国医国药，2022，33（11）：2665-2669.
[13]HUANG X Q, CHU Z, FANG Y M, et al.Research progress on hypoglycemic mechanism of plant polyphenols[J].Sci Technol Food Ind,2021,42(18):461-469.
[14]WANG Y,LIU N,XUE X，et al.Purification,structural characterization and in vivo immunoregulatory activity of a novel polysaccharide from Polygonatum sibiricum[J].Int J Biol Macromol,2020,160:688-694.
[15]程妍，张守伟，李宜国.基于OPG/RANKL信号通路探讨黄精多糖对糖尿病大鼠骨质疏松骨代谢的影响[J].中国老年学杂志，2023，43（16）：4029-4033.
[16]龙杰凤，韦国兰，李荡，等.黄精醪糟发酵液成分及对α-葡萄糖苷酶抑制活性研究[J].粮食与油脂，2022，35（5）：103-106，120.
[17]刘跃钧，朱虹，蒋燕锋，等.复方多花黄精混合提取物的降血脂作用[J].食品工业科技，2019，40（6）：285-288，293.
[18]杨嘉妮，朱星枚，袁盼盼，等.基于网络药理学和分子对接探讨黄精治疗非小细胞肺癌的物质基础与分子机制[J].中国医药导报，2022，19（8）：16-20.
[19]吕彩云，夏娟，林永翔，等.一株具有拮抗作用黄精内生菌HJ-3的鉴定及抗菌活性研究[J].天然产物研究与开发，2022，34（3）：399-406.
[20]王俊楠，卢琪，薛淑静，等.九蒸九制对鸡头黄精理化性质及抗氧化性的影响[J].现代食品科技，2024，40（2）：231-245.
[21]常晖，靳鹏博，马存德，等.不同方法炮制黄精后其化学成分及药理作用研究进展[J].世界中医药，2023，18（21）：3125-3135.
[22]管彦辉，梁正维，施扬，等.滇黄精炮制前后化学成分变化研究[J].中草药，2024，55（11）：3647-3658.
[23]王俊楠，卢琪，薛淑静，等.九蒸九制对鸡头黄精理化性质及抗氧化性的影响[J].现代食品科技，2024，40（2）：231-245.
[24]周改莲，李健，徐梦云，等.广西产多花黄精不同炮制工艺研究[J].中国民族民间医药，2018，27（10）：34-37.
[25]XIA J B,MEI X Y,CHENG H,et al.The functional components of byproduct resources from the aerial parts of Polygonatum cyrtonema Hua[J].Agriculture,2023,13(9):1820.
[26]王天梅，陈松树，李丹丹，等.不同产地黄精主要成分比较研究[J].特产研究，2021，43（4）：44-48，52.
[27]钱森和，金浩然，魏明，等.响应面法优化黄精黄酮提取工艺及其抗氧化活性研究[J].安徽工程大学学报，2017，32（4）：8-13，25.
[28]孙细珍，熊亚青，刘家欢，等.清香型白酒新酒和陈酒感官特征及香气物质的差异性分析[J].食品科学，2023，44（14）：266-273.
[29]张帆，钟伟华，吕春秋，等.九蒸九制工艺过程中黄精理化品质特征及多糖组分的演变[J].现代食品科技，2022，38（9）：171-180.
[30]杨灵光，刘欣欣，邓闯，等.不同热处理方法对元宝枫叶与花中酚类成分及抗氧化活性的影响[J].食品工业科技，2024，45（4）：42-52.
[31]YANG J J,ZHANG X,DAI J F,et al.Effect of fermentation modification on the physicochemical characteristics and anti-aging related activities of Polygonatum kingianum polysaccharides[J].Int J Biol Macromol,2023,235:123661.
[32]杨壮，刘怡琳，李隆熙，等.固态发酵制备黄精多糖的工艺优化、理化特性及抗氧化活性[J].食品与发酵工业，2024，50（7）：92-98.
[33]吴丰鹏，李芹英，吴彦超，等.九蒸九制对黄精多糖单糖组成及其抗氧化性的影响[J].食品工业科技，2021，42（2）：42-46.
[34]李芷芊，李占明，吴雨凌，等.微波一步固化脱水多花黄精切片的植物化学成分、水分状态及形态研究[J].中国果菜，2021，41（6）：80-87.
[35]郭旭琴.温度和水分对银杏叶黄酮合成的影响[D].南京：南京林业大学，2012.
[36]杨圣贤，杨正明，陈奕军，等.黄精“九蒸九制”炮制过程中多糖及皂苷的含量变化[J].湖南师范大学学报（医学版），2015，12（5）：141-144.
[37]倪兴婷，孙细珍，江莎，等.感官定量描述结合化学分析技术解析浓香型白酒窖泥臭味物质基础[J].食品与发酵工业，2024，50（10）：213-224.
[38]申子佳，陈飞龙，贾朝玉，等.酸豆外果皮黄酮类成分及其抗氧化活性评价[J].天然产物研究与开发，2023，35（11）：1877-1886.